| 英文缩略词表 | 第1-11页 |
| 中文摘要 | 第11-13页 |
| 英文摘要 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一部分 CCM构建及其相容性的实验研究 | 第17-43页 |
| 实验一 CCM成膜性及其物理性质的研究 | 第17-29页 |
| 材料与方法 | 第17-19页 |
| 1.主要试剂及仪器 | 第17页 |
| 2.鼠尾胶原的制备 | 第17-18页 |
| 3.壳聚糖溶液配制方法 | 第18页 |
| 4.CCM的制备方法 | 第18-19页 |
| 5.大体观察 | 第19页 |
| 6.物理特性的检测 | 第19页 |
| 7.组织学检查 | 第19页 |
| 8.统计学处理 | 第19页 |
| 结果 | 第19-22页 |
| 1.大体观察结果 | 第19-20页 |
| 2.各组CCM机械强度比较 | 第20页 |
| 3.各组CCM保水率比较 | 第20-21页 |
| 4.各组CCM吸水率比较 | 第21页 |
| 5.HE染色结果 | 第21-22页 |
| 讨论 | 第22-26页 |
| 参考文献 | 第26-27页 |
| 附录1:实验照片 | 第27-29页 |
| 实验二 CCM生物相容性的研究 | 第29-42页 |
| 一 CCM细胞相容性的研究 | 第29-33页 |
| 材料与方法 | 第29-31页 |
| 1.主要试剂 | 第29页 |
| 2.主要仪器与耗材 | 第29页 |
| 3.人皮肤细胞的复苏与传代 | 第29-30页 |
| 4.CCM的制备 | 第30页 |
| 5.细胞接种 | 第30页 |
| 6.组织学观察 | 第30页 |
| 7.细胞增值率的检测 | 第30页 |
| 8.Fb功能检测 | 第30-31页 |
| 9.统计学处理 | 第31页 |
| 结果 | 第31-33页 |
| 1.大体观察 | 第31页 |
| 2.HE染色结果 | 第31页 |
| 3.不同制备方法对Fb增殖率的影响 | 第31页 |
| 4.不同制备方法对HKC的影响 | 第31-32页 |
| 5.不同制备方法对Fb功能的影响 | 第32-33页 |
| 二 CCM组织相容性研究 | 第33-34页 |
| 材料与方法 | 第33-34页 |
| 1.主要试剂与仪器 | 第33页 |
| 2.CCM的制备 | 第33页 |
| 3.动物模型及分组 | 第33-34页 |
| 4.取材及观察指标 | 第34页 |
| 结果 | 第34页 |
| 1.大体观察结果 | 第34页 |
| 2.组织学观察 | 第34页 |
| 讨论 | 第34-37页 |
| 参考文献 | 第37-38页 |
| 附录2:实验照片 | 第38-42页 |
| 小结 | 第42-43页 |
| 第二部分 种子细胞相关研究 | 第43-73页 |
| 实验一 胎儿皮肤异体细胞库的建立 | 第43-52页 |
| 材料与方法 | 第43-45页 |
| 1.主要试剂与仪器 | 第43页 |
| 2.胎儿HKC库的建立 | 第43-44页 |
| 3.胎儿Fb库的建立 | 第44-45页 |
| 4.细胞形态学观察 | 第45页 |
| 结果 | 第45-46页 |
| 讨论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-49页 |
| 附录3:实验照片 | 第49-52页 |
| 实验二 不同培养方法培养Fb的研究 | 第52-58页 |
| 材料与方法 | 第52-53页 |
| 1.主要试剂与仪器 | 第52页 |
| 2.取材 | 第52页 |
| 3.Fb培养方法 | 第52-53页 |
| 4.Fb形态学观察 | 第53页 |
| 5.各组Fb增值率检测 | 第53页 |
| 6.统计学处理 | 第53页 |
| 结果 | 第53-54页 |
| 1.光镜检查结果 | 第53页 |
| 2.MTT结果 | 第53-54页 |
| 讨论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-57页 |
| 附录4:实验照片 | 第57-58页 |
| 实验三 Ca~(2+)对HKC增殖与分化调控作用研究 | 第58-65页 |
| 材料与方法 | 第58-59页 |
| 1.材料 | 第58页 |
| 2.HKC培养 | 第58页 |
| 3.Ca~(2+)对HKC体外生长的影响 | 第58-59页 |
| 4.细胞组织化学 | 第59页 |
| 5.统计学分析 | 第59页 |
| 结果 | 第59-60页 |
| 1.形态学指标 | 第59-60页 |
| 2.MTT结果 | 第60页 |
| 讨论 | 第60-63页 |
| 参考文献 | 第63-64页 |
| 附录5:实验照片 | 第64-65页 |
| 实验四 鼠尾胶原构建全层皮肤的实验研究 | 第65-72页 |
| 材料与方法 | 第65-66页 |
| 1.主要试剂与仪器 | 第65页 |
| 2.鼠尾胶原的提取 | 第65页 |
| 3.Fb与HKC培养 | 第65页 |
| 4.全层皮肤的构建 | 第65页 |
| 5.HE染色方法 | 第65-66页 |
| 结果 | 第66页 |
| 1 大体观察结果 | 第66页 |
| 2.光镜观察结果 | 第66页 |
| 3.HE染色结果 | 第66页 |
| 讨论 | 第66-69页 |
| 参考文献 | 第69-70页 |
| 附录6:实验照片 | 第70-72页 |
| 小结 | 第72-73页 |
| 第三部分 活性CCLMPADM的构建及应用 | 第73-91页 |
| 实验一 活性CCLMPADM的构建 | 第73-75页 |
| 材料与方法 | 第73-75页 |
| 1.主要试剂 | 第73页 |
| 2.主要仪器 | 第73页 |
| 3.激光微孔真皮的制备 | 第73-74页 |
| 4.CCLMPADM的制备 | 第74页 |
| 5.大鼠皮肤Fb培养 | 第74页 |
| 6.活性CCLMPADM的构建 | 第74-75页 |
| 结果 | 第75页 |
| 1.CCLMPADM性状 | 第75页 |
| 2.活性CCLMPADM上培养Fb的观察 | 第75页 |
| 实验二 活性CCLMPADM修复全层皮肤缺损的实验研究 | 第75-79页 |
| 材料与方法 | 第75-77页 |
| 1.主要试剂 | 第75页 |
| 2.主要仪器 | 第75页 |
| 3.活性CCLMPADM制备 | 第75-76页 |
| 4.动物模型及分组 | 第76页 |
| 5.观察指标 | 第76-77页 |
| 6.统计学处理 | 第77页 |
| 结果 | 第77-79页 |
| 1.大体观察结果 | 第77-78页 |
| 2.HE染色结果 | 第78-79页 |
| 3.免疫组化染色结果 | 第79页 |
| 4.毛细血管密度 | 第79页 |
| 讨论 | 第79-83页 |
| 参考文献 | 第83-85页 |
| 附录7:实验照片 | 第85-90页 |
| 小结 | 第90-91页 |
| 全文结论 | 第91-92页 |
| 文献综述 | 第92-101页 |
| 参考文献 | 第97-101页 |
| 学习期间发表论文及待发表论文情况 | 第101-102页 |
| 致谢 | 第102页 |