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取代酚类物质的雌激素效应研究及相关构效分析

第一章 文献综述第1-28页
 1.1 前言第11页
 1.2 雌激素类物质的作用机制第11-13页
 1.3 环境雌激素的种类及其所引起的生物效应第13-15页
  1.3.1 烷基酚类第13页
  1.3.2 邻苯二甲酸酯类第13页
  1.3.3 双酚化合物第13页
  1.3.4 有机氯杀虫剂和除草剂第13页
  1.3.5 植物雌激素和真菌雌激素第13-14页
  1.3.6 金属类第14页
  1.3.7 二硫代氨基甲酸酯类第14页
  1.3.8 多卤芳烃第14-15页
 1.4 环境雌激素的筛选方法第15-19页
  1.4.1 体内实验法第15-17页
   1.4.1.1 哺乳动物实验第15-16页
   1.4.1.2 卵黄蛋白原第16-17页
   1.4.1.3 体内生物实验的优缺点第17页
  1.4.2 体外生物实验第17-19页
   1.4.2.1 雌激素受体结合实验第17页
   1.4.2.2 细胞培养第17-18页
   1.4.2.3 重组酵母系统鉴别法第18页
   1.4.2.4 乳铁蛋白mRNA法第18-19页
 1.5 开展结构与类雌激素活性关系(QSAR)的研究第19-24页
  1.5.1 QSAR研究的流程和理论基础第19-21页
   1.5.1.1 QSAR研究的基本流程第20-21页
   1.5.1.2 QSAR研究的方法基础第21页
  1.5.2 QSAR的结构参数第21-22页
  1.5.3 QSAR研究的基本方法第22-24页
 1.6 QSAR研究的意义第24-25页
 1.7 本项研究的内容、目的与意义第25-28页
  1.7.1 本项研究的内容、目的第25页
  1.7.2 拟采取的研究方法、技术路线第25-26页
  1.7.3 受试化合物的选取第26-27页
  1.7.4 实验内容第27页
  1.7.5 选题的目的与意义第27-28页
第二章 雌激素效应评价方法的建立第28-41页
 2.1 前言第28页
 2.2 鲤鱼VTG多克隆抗体对金鱼VTG的可识别性研究第28-33页
  2.2.1 实验部分第28-29页
   2.2.1.1 实验仪器、药品第28-29页
   2.2.1.2 实验动物第29页
  2.2.2 药物试验要第29-31页
   2.2.2.1 点杂交第29-30页
   2.2.2.2 泳及免疫印迹第30页
   2.2.2.3 金鱼VTG分子量的确定第30-31页
  2.2.3 结果第31-32页
   2.2.3.1 电泳检测第31页
   2.2.3.2 点杂交和免疫印迹第31-32页
  2.2.4 讨论第32-33页
 2.3 肝脏匀浆法灵敏度的评价及金鱼暴露时间的选择第33-41页
  2.3.1 实验部分第34-39页
   2.3.1.1 实验仪器及药品第34页
   2.3.1.2 实验动物第34页
   2.3.1.3 暴露实验第34-35页
   2.3.1.4 标准曲线的作法第35页
   2.3.1.5 VTG检测第35-38页
   2.3.1.6 蛋白质浓度测定第38-39页
  2.3.2 结果与讨论第39-40页
  2.3.3 结论第40-41页
第三章 取代酚类物质雌激素效应评价第41-52页
 3.1 前言第41页
 3.2 实验部分第41-52页
  3.2.1 材料与方法第41-44页
   3.2.1.1 试验仪器与试剂第41-43页
    3.2.1.1.1 实验仪器第41-42页
    3.2.1.1.2 实验试剂第42页
    3.2.1.1.3 受试化合物第42-43页
   3.2.1.2 实验动物第43页
   3.2.1.3 暴露实验第43页
   3.2.1.4 标准曲线的作法第43-44页
   3.2.1.5 金鱼幼鱼肝脏中VTG的测定第44页
   3.2.1.6 数据处理第44页
  3.2.2 结果第44-49页
  3.2.3 讨论第49-51页
  3.2.4 结论第51-52页
第四章 取代酚类物质雌激素效应的构效分析第52-61页
 4.1 前言第52页
 4.2 分子特征参数第52-53页
 4.3 建模方法第53-54页
 4.4 构效分析第54-58页
  4.4.1 药物雌激素效应的半有效浓度的计算第54-57页
  4.4.2 构效分析第57-58页
 4.5 讨论第58-59页
 4.6 结论第59-61页
第五章 结论部分第61-62页
结束语第62-63页
参考文献第63-74页
致谢第74页

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