| 前言 | 第1-9页 |
| 第1章 概述 | 第9-26页 |
| 1．1 粪便对近岸海域的污染 | 第9-12页 |
| 1．1．1 粪便污染的分类 | 第9页 |
| 1．1．2 粪便污染对近岸海域的危害 | 第9-11页 |
| 1．1．3 准确示踪和控制污染源是解决粪便污染危害的关键 | 第11-12页 |
| 1．2 粪便污染源示踪技术研究现状 | 第12-15页 |
| 1．2．1 污染源示踪技术的分类 | 第12-13页 |
| 1．2．2 微生物源示踪简介 | 第13-15页 |
| 1．3 粪便污染源示踪相关技术 | 第15-26页 |
| 1．3．1 示踪微生物(示踪因子)的筛选 | 第15-16页 |
| 1．3．2 微生物源示踪的微生物技术 | 第16-17页 |
| 1．3．3 微生物源示踪的生物化学(表型)技术 | 第17-18页 |
| 1．3．4 微生物源示踪中的化学方法 | 第18页 |
| 1．3．5 微生物源示踪的分子学(基因型)技术-DNA“指纹”技术 | 第18-21页 |
| 1．3．6 聚合酶链式反应技术 | 第21-22页 |
| 1．3．7 DNA电泳技术 | 第22-24页 |
| 1．3．8 本论文的设计思想 | 第24-26页 |
| 第2章 示踪因子(E．coli)的分离纯化 | 第26-39页 |
| 2．1 材料 | 第26-28页 |
| 2．1．1 粪便标本 | 第26-27页 |
| 2．1．2 培养基 | 第27页 |
| 2．1．3 试剂 | 第27页 |
| 2．1．4 对照标准菌株 | 第27页 |
| 2．1．5 设备 | 第27-28页 |
| 2．2 方法 | 第28-31页 |
| 2．2．1 真空冷冻干燥菌种 ATCC25922的恢复培养 | 第28页 |
| 2．2．2 E．coli的分离 | 第28-29页 |
| 2．2．3 E．coli的镜检(革兰氏染色) | 第29页 |
| 2．2．4 E．coli的生化试验 | 第29-30页 |
| 2．2．5 E．coli纯化保存 | 第30-31页 |
| 2．2．6 E．coli冻存检测 | 第31页 |
| 2．3 结果与讨论 | 第31-38页 |
| 2．3．1 ATCC25922的活化 | 第31页 |
| 2．3．2 E．coli的镜检结果 | 第31页 |
| 2．3．3 E．coli的分离结果 | 第31-37页 |
| 2．3．4 E．coli冻存检测结果 | 第37-38页 |
| 2．4 小结 | 第38-39页 |
| 第3章 E．coli的16S-23S ISR“指纹”图谱分析 | 第39-64页 |
| 3．1 材料 | 第39-42页 |
| 3．1．1 菌株 | 第39页 |
| 3．1．2 培养基 | 第39页 |
| 3．1．3 试剂 | 第39页 |
| 3．1．4 引物 | 第39-40页 |
| 3．1．5 溶液配制~[73] | 第40-41页 |
| 3．1．6 电泳凝胶的制备 | 第41-42页 |
| 3．1．7 主要仪器 | 第42页 |
| 3．2 方法 | 第42-50页 |
| 3．2．1 E．coli基因组 DNA提取 | 第42-46页 |
| 3．2．2 16S-23S ISR PCR条件摸索 | 第46-48页 |
| 3．2．3 聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶电泳 | 第48-49页 |
| 3．2．4 E．coli“指纹”图谱构建 | 第49-50页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第50-63页 |
| 3．3．1 E．coli基因组DNA提取方法比较 | 第50-51页 |
| 3．3．2 16S-23S ISR PCR条件摸索 | 第51-53页 |
| 3．3．3 聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶电泳 | 第53-57页 |
| 3．3．4 E．coli 16S-23S ISR“指纹”图谱分析 | 第57-63页 |
| 3．4 小结 | 第63-64页 |
| 结语 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 研究生履历 | 第75页 |
