摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-24页 |
Caveolin家族蛋白及其与脑功能的关系 | 第11-24页 |
·Caveolin家族蛋白概述 | 第11-16页 |
·Caveolin蛋白的结构特征 | 第11-13页 |
·Caveolin蛋白的功能 | 第13-16页 |
·介导膜泡运输 | 第13-14页 |
·维持胆固醇稳态 | 第14-15页 |
·调控信号转导 | 第15-16页 |
·Caveolin与脑功能 | 第16-19页 |
·Caveolin与神经发育 | 第16页 |
·Caveolin与突触可塑性 | 第16-17页 |
·Caveolin与神经退行性疾病 | 第17-19页 |
·Caveolin与阿尔茨海默病(Alzheimer's disease,AD) | 第17-18页 |
·Caveolin与帕金森病(Parkinson's disease,PD) | 第18页 |
·Caveolin与朊蛋白病(Prion disease,PrD) | 第18-19页 |
·结语与展望 | 第19-20页 |
·参考文献 | 第20-24页 |
第二章 Caveolin-1蛋白在大鼠空间学习记忆中的作用 | 第24-42页 |
·材料与仪器 | 第24-25页 |
·实验动物 | 第24-25页 |
·主要试剂 | 第25页 |
·主要仪器 | 第25页 |
·实验方法 | 第25-32页 |
·Morris水迷宫行为训练 | 第25-27页 |
·Morris水迷宫简介 | 第25-26页 |
·Morris水迷宫训练步骤 | 第26-27页 |
·Morris水迷宫数据分析 | 第27页 |
·大鼠大脑海马组织分离 | 第27-28页 |
·脑蛋白提取液的制备及蛋白含量的测定 | 第28-29页 |
·配置溶液 | 第28页 |
·脑组织蛋白的提取 | 第28页 |
·蛋白质浓度的测定 | 第28-29页 |
·SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第29-30页 |
·主要溶液配制 | 第29-30页 |
·配制12%分离胶和4%浓缩胶 | 第30页 |
·蛋白质样品制备 | 第30页 |
·电泳 | 第30页 |
·蛋白质免疫印迹(Western Blot)测定蛋白表达 | 第30-32页 |
·主要试剂配制 | 第30-31页 |
·转膜 | 第31-32页 |
·统计分析 | 第32页 |
·结果 | 第32-36页 |
·大鼠的Morris水迷宫学习训练成绩 | 第32-35页 |
·获得性训练中大鼠空间分辨学习的表现 | 第32-34页 |
·大鼠在探查试验中的表现 | 第34-35页 |
·Morris水迷宫训练对大鼠海马Cav-1等蛋白表达的影响 | 第35-36页 |
·Morris水迷宫训练引起大鼠海马Cav-1表达增高 | 第35页 |
·Morris水迷宫训练对海马不同信号通路蛋白表达的影响 | 第35-36页 |
·讨论 | 第36-40页 |
·小结 | 第40页 |
·参考文献 | 第40-42页 |
第三章 Caveolin-1蛋白在糖尿病小鼠空间学习记忆中的作用 | 第42-54页 |
·材料与仪器 | 第42-43页 |
·实验动物 | 第42-43页 |
·主要试剂 | 第43页 |
·主要仪器 | 第43页 |
·实验方法 | 第43-45页 |
·四氧嘧啶糖尿病小鼠模型的建立 | 第43-44页 |
·四氧嘧啶溶液的配制(1%) | 第43-44页 |
·建模方法 | 第44页 |
·药物治疗 | 第44页 |
·Morris水迷宫行为训练 | 第44页 |
·大脑海马组织分离 | 第44页 |
·脑蛋白提取液的制备及蛋白含量的测定 | 第44页 |
·SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第44页 |
·蛋白质免疫印迹(Western Blot)测定蛋白表达 | 第44-45页 |
·统计分析 | 第45页 |
·结果 | 第45-51页 |
·糖尿病小鼠的Morris水迷宫学习训练成绩 | 第45-48页 |
·获得性训练中糖尿病小鼠空间分辨学习的表现 | 第45-47页 |
·糖尿病小鼠在探查试验中的表现 | 第47-48页 |
·Morris水迷宫训练对糖尿病小鼠海马蛋白表达的影响 | 第48-51页 |
·Morris水迷宫训练对糖尿病小鼠海马Cav-1表达的影响 | 第48页 |
·Morris水迷宫训练对海马内信号蛋白表达的影响 | 第48-51页 |
·讨论 | 第51-52页 |
·小结 | 第52页 |
·参考文献 | 第52-54页 |
致谢 | 第54-56页 |
个人简介 | 第56页 |