| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第7-21页 |
| ·过氧化物酶 | 第7-15页 |
| ·植物POD 的类型划分和组织定位 | 第7-8页 |
| ·POD 分子结构特点 | 第8-9页 |
| ·POD 的分离、纯化和鉴定 | 第9-10页 |
| ·酶蛋白基因表达与调控的分子生物学 | 第10-11页 |
| ·酶的生理功能及与环境胁迫的关系 | 第11-14页 |
| ·植物过氧化物酶分离纯化方面的研究进展 | 第14-15页 |
| ·女贞及女贞子的研究 | 第15-20页 |
| ·女贞及女贞子活性成分及其利用价值 | 第16-19页 |
| ·女贞及女贞子的各种利用价值 | 第19-20页 |
| ·研究目的及意义 | 第20-21页 |
| 第二章 女贞叶POD 提取、分离及添加剂对其活性的影响 | 第21-31页 |
| ·引言 | 第21页 |
| ·材料与方法 | 第21-23页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·试剂与仪器 | 第21页 |
| ·主要实验方法 | 第21-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-28页 |
| ·几种植物POD 活性比较 | 第23-24页 |
| ·粗酶提取 | 第24-26页 |
| ·女贞不同生长时期过氧化物酶变化 | 第26页 |
| ·女贞叶过氧化物酶粗酶热稳定性 | 第26-28页 |
| ·女贞过氧化物酶粗酶最适pH | 第28页 |
| ·讨论 | 第28-31页 |
| 第三章 女贞叶POD 的分离纯化 | 第31-39页 |
| ·引言 | 第31页 |
| ·技术路线 | 第31-32页 |
| ·材料与方法 | 第32-33页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·试剂与仪器 | 第32页 |
| ·主要实验方法 | 第32-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-37页 |
| ·硫酸铵－丙酮协同沉淀 | 第33-35页 |
| ·Sephadex G-100 柱层析 | 第35页 |
| ·DEAE-纤维素阴离子交换层析 | 第35-36页 |
| ·纯化倍数与回收率 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第四章 女贞果实POD 的分离纯化 | 第39-47页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·材料与方法 | 第39-40页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·试剂与仪器 | 第39页 |
| ·主要实验方法 | 第39-40页 |
| ·结果与分析 | 第40-45页 |
| ·硫酸铵-丙酮协同沉淀 | 第40-42页 |
| ·Sephadex G-100 柱层析 | 第42页 |
| ·DEAE-纤维素阴离子交换层析 | 第42-44页 |
| ·纯化倍数与回收率 | 第44-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| 第五章 质外体POD 的分离提取 | 第47-51页 |
| ·引言 | 第47页 |
| ·材料与方法 | 第47-48页 |
| ·实验材料 | 第47页 |
| ·试剂与仪器 | 第47页 |
| ·主要实验方法 | 第47-48页 |
| ·结果与分析 | 第48-50页 |
| ·Sephadex G-100 凝胶柱层析 | 第48页 |
| ·电泳鉴定 | 第48-49页 |
| ·酶促反应动力学测定 | 第49页 |
| ·纯化倍数与回收率 | 第49-50页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| 第六章 女贞果实POD 酶学性质研究 | 第51-59页 |
| ·引言 | 第51页 |
| ·材料与方法 | 第51-52页 |
| ·实验材料 | 第51页 |
| ·试剂与仪器 | 第51页 |
| ·主要实验方法 | 第51-52页 |
| ·结果与分析 | 第52-57页 |
| ·POD 最适pH | 第52页 |
| ·温度稳定性和最适温度 | 第52-53页 |
| ·酶促反应动力学测定 | 第53-54页 |
| ·二肽对POD 热稳定性的影响 | 第54页 |
| ·海藻糖，β-环糊精，PEG-6000 对果实POD 热稳定性的影响 | 第54-56页 |
| ·无机离子对POD 活性的影响 | 第56-57页 |
| ·讨论 | 第57-59页 |
| 第七章 结论与展望 | 第59-61页 |
| ·结论 | 第59页 |
| ·展望 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第73页 |