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AP-2α在动脉粥样硬化和HeLa细胞凋亡中的作用

英文缩写表第1-5页
中文摘要第5-8页
英文摘要第8-15页
综述第15-57页
 1.转录因子AP-2概述第15-20页
   ·AP-2家族的结构第15-16页
   ·AP-2与胚胎发育第16-17页
   ·AP-2调控细胞生长第17-18页
   ·AP-2与肿瘤第18-20页
 2.动脉粥样硬化概述第20-26页
   ·AS的流行病学及危险因素第21-22页
   ·AS的病理变化第22-26页
 3.AP-2与AS相关基因的联系第26-42页
   ·AP-2与apoE第27-30页
   ·AP-2与MMP第30-33页
   ·AP-2与脂联素第33-35页
   ·AP-2与VEGF第35-38页
   ·AP-2与ABCA1第38-42页
 4.小结第42-43页
 5.参考文献第43-57页
第一部分 转录因子AP-2α通过直接调节CD36参与动脉粥样硬化第57-121页
 前言第57-62页
 材料与方法第62-84页
  1.仪器设备第62-63页
  2.材料与试剂第63-69页
  3.实验方法第69-83页
   ·载体构建和寡核苷酸合成第69-70页
   ·细胞培养与瞬时转染第70-73页
   ·oxLDL的制备和鉴定第73页
   ·免疫组化染色第73-74页
   ·原位杂交检测第74-75页
   ·RNA抽提和相对定量RT-PCR第75-76页
   ·免疫沉淀和Western Blot检测第76-78页
   ·细胞免疫荧光第78页
   ·油红0染色检测细胞内中性脂质第78-79页
   ·高效液相色谱(HPLC)检测细胞内胆固醇及胆固醇酯含量第79页
   ·萤光素酶试验(Luciferase assay)第79-80页
   ·电泳迁移率变动分析试验(EMSA)第80-81页
   ·染色质免疫沉淀(ChIP)第81-83页
  4.统计学分析第83-84页
 实验结果第84-105页
  1.AP-2α在AS病变血管内表达第84-88页
  2.AP-2α对大鼠血管平滑肌细胞表达CD36的影响第88-91页
  3.AP-2α对oxLDL诱导大鼠血管平滑肌细胞积蓄脂质的影响第91-95页
  4.AP-2α结合到CD36的启动子区域第95-99页
  5.CD36基因启动子区域AP-2结合位点的鉴定第99-101页
  6.AP-2α对ABCA1的mRNA水平的影响第101-102页
  7.多沙唑嗪对AP-2α调控CD36和ABCA1的影响第102-105页
 讨论第105-121页
  1.转录因子在AS中的作用第105-109页
   ·NF-κB在AS中的作用第105-107页
   ·PPAR在AS中的作用第107-109页
  2.转录因子AP-2α在AS中的可能作用第109-116页
  3.以转录因子为靶标防治AS疾病第116-121页
   ·NF-κB作为药物治疗靶点的研究第116-118页
   ·PPAR作为药物治疗靶点的研究第118-119页
   ·AP-2α可望作为药物治疗靶点的研究第119-121页
第二部分 转录因子AP-2α参与多沙唑嗪诱导的HeLa细胞凋亡第121-143页
 前言第121-123页
 材料与方法第123-129页
  1.仪器设备与试剂配制第123页
  2.实验方法第123-129页
   ·质粒构建、寡核苷酸合成以及药品第123页
   ·细胞培养和瞬时转染第123-124页
   ·RNA抽提和相对定量RT-PCR第124页
   ·Western blot分析第124页
   ·DNA ladder检测第124-125页
   ·Hoechst 33258染色第125页
   ·流式分析第125-126页
   ·Caspase-3活性分析第126-128页
   ·统计学分析第128-129页
 实验结果第129-138页
  1.多沙唑嗪以剂量依赖性方式诱导HeLa细胞凋亡第129-132页
  2.AP-2α参与多沙唑嗪诱导的HeLa细胞凋亡第132-133页
  3.多沙唑嗪上调AP-2α在HeLa细胞内的表达第133-134页
  4.多沙唑嗪在HeLa细胞内通过AP-2α影响caspase-3路径第134-138页
 讨论第138-141页
 结语第141-143页
参考文献第143-159页
致谢第159-160页
攻读博士学位期间已发表及待发表的学术论文第160-161页

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