| 中文摘要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-8页 |
| 1 引言 | 第8-14页 |
| ·scFv 的优点及其表达体系 | 第8-9页 |
| ·scFv 的原核表达体系 | 第8-9页 |
| ·scFv 的真核表达体系 | 第9页 |
| ·植物生物反应器表达抗体 | 第9-12页 |
| ·scFv 稳定表达系统 | 第10-11页 |
| ·scFv 瞬时表达系统 | 第11-12页 |
| ·立题依据 | 第12-14页 |
| 2 材料与方法 | 第14-24页 |
| ·实验材料 | 第14-15页 |
| ·植物材料 | 第14页 |
| ·菌种 | 第14页 |
| ·质粒 | 第14页 |
| ·化学药品及试剂 | 第14-15页 |
| ·培养基 | 第15页 |
| ·PCR 扩增引物 | 第15页 |
| ·实验方法 | 第15-19页 |
| ·p35S-30B-scFv 表达体系构建 | 第15-16页 |
| ·农杆菌感受态的制备 | 第16页 |
| ·冻融法转化农杆菌 | 第16-17页 |
| ·侵染材料烟草幼苗的培养 | 第17页 |
| ·农杆菌侵染烟草 | 第17页 |
| ·侵染途径的筛选及GFP 表达的表型观察 | 第17-19页 |
| ·依据报告基因GFP 的表达，分析评价表达系统工作情况 | 第19页 |
| ·烟草中外源基因scFv 的检测 | 第19-23页 |
| ·scFv RNA 水平的检测 | 第19页 |
| ·scFv 蛋白水平的检测 | 第19-22页 |
| ·ELISA 检测计算烟草中scFv 表达量 | 第22-23页 |
| ·ELISA 检测表达的抗aFGF scFv 蛋白与抗原的结合活性 | 第23-24页 |
| 3 结果 | 第24-32页 |
| ·p355-30B-scFv 载体构建 | 第24-25页 |
| ·EHA105 农杆菌转化 | 第25页 |
| ·农杆菌生长曲线测定 | 第25页 |
| ·农杆菌侵染后的烟草病毒症状 | 第25-26页 |
| ·侵染途径的筛选及GFP 表达的表型观察 | 第26-27页 |
| ·注射侵染法结果 | 第26-27页 |
| ·真空侵染法结果 | 第27页 |
| ·注射法和真空侵染法简单的比较 | 第27-28页 |
| ·外源基因scFv 在烟草中的表达 | 第28-30页 |
| ·烟草中表达 scFv RNA 水平检测 | 第28页 |
| ·烟草中表达抗 aFGF-scFv 蛋白水平检测 | 第28-30页 |
| ·烟草中表达的scFv 占总可溶性蛋白的量 | 第30-31页 |
| ·ELASA 检测植物中表达的抗aFGF-scfv 蛋白与抗原的结合活性 | 第31-32页 |
| 4 讨论 | 第32-35页 |
| ·植物病毒表达载体的建立 | 第32-33页 |
| ·两种侵染方法简单的比较 | 第33页 |
| ·烟草中scFv 的表达 | 第33-35页 |
| 5 结论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-40页 |
| 致谢 | 第40页 |
