| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-30页 |
| 第一章 小麦转基因技术研究进展 | 第12-23页 |
| 1 小麦转基因技术研究概况 | 第12-13页 |
| 2 小麦遗传转化的主要方法 | 第13-19页 |
| ·基因枪法 | 第14-15页 |
| ·农杆菌介导法 | 第15-17页 |
| ·其他转化方法 | 第17-19页 |
| 3 小麦组织培养及其遗传转化研究 | 第19-21页 |
| ·受体系统的选择 | 第19-20页 |
| ·培养条件 | 第20-21页 |
| 4 小麦遗传转化存在的主要问题 | 第21页 |
| 5 本研究的目的及意义 | 第21-23页 |
| 第二章 抗坏血酸过氧化物酶基因APX及植物抗氧化胁迫基因工程研究进展 | 第23-30页 |
| 1 植物活性氧产生及其清除系统 | 第23-26页 |
| ·活性氧产生的途径 | 第23-24页 |
| ·活性氧的酶促清除系统 | 第24-26页 |
| 2 植物抗坏血酸过氧化物酶及其在活性氧清除中的作用 | 第26-27页 |
| 3 植物抗氧化胁迫基因工程研究进展 | 第27-28页 |
| 4 本研究的目的及主要技术路线 | 第28-30页 |
| ·研究目的意义 | 第28-29页 |
| ·技术路线 | 第29-30页 |
| 第二部分 研究报告 | 第30-64页 |
| 第一章 普通小麦品种Alondra's遗传转化体系的建立 | 第30-38页 |
| 1 材料与方法 | 第31-33页 |
| ·试验材料 | 第31页 |
| ·试验设计 | 第31-32页 |
| ·试验方法 | 第32-33页 |
| ·数据处理 | 第33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-36页 |
| ·不同处理对Alondra's愈伤组织诱导的影响 | 第33-34页 |
| ·不同处理对Alondra's分化再生的影响 | 第34-35页 |
| ·Alondra's的遗传转化和转基因植株的鉴定 | 第35-36页 |
| 3 讨论 | 第36-38页 |
| 第二章 农杆菌介导的小麦遗传转化条件优化研究 | 第38-44页 |
| 1 材料与方法 | 第38-40页 |
| ·供试材料及菌株 | 第38页 |
| ·小麦幼胚愈伤培养 | 第38-39页 |
| ·农杆菌的活化及悬浮液的制备 | 第39页 |
| ·农杆菌介导的遗传转化 | 第39-40页 |
| ·Gus组织化学染色及数据分析 | 第40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-42页 |
| ·预培养对小麦愈伤组织Gus基因瞬时表达频率的影响 | 第40页 |
| ·菌液浓度及侵染时间对小麦愈伤组织Gus基因瞬时表达频率的影响 | 第40-41页 |
| ·乙酰丁香酮(AS)浓度小麦愈伤组织Gus基因瞬时表达频率的影响 | 第41-42页 |
| ·共培养时间小麦愈伤组织Gus基因瞬时表达频率的影响 | 第42页 |
| 3 讨论 | 第42-44页 |
| 第三章 小麦Ta-APX基因的遗传转化及其功能的初步研究 | 第44-64页 |
| 1 材料与方法 | 第45-54页 |
| ·试验材料 | 第45-46页 |
| ·试验方法 | 第46-54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-64页 |
| ·Ta-APX基因的遗传转化 | 第54-55页 |
| ·T_0代转基因植株的分子检测 | 第55页 |
| ·T_1代转基因植株的PCR检测 | 第55-56页 |
| ·T_1代转基因植株的RT-PCR分析 | 第56-57页 |
| ·T_1代转基因植株APX酶活性检测 | 第57-58页 |
| ·T_1代植株苗期白粉病抗性鉴定 | 第58-59页 |
| ·T_1代转基因植株的赤霉病抗性鉴定 | 第59-61页 |
| ·转基因植株主要农艺性状分析 | 第61-64页 |
| 全文结论 | 第64-68页 |
| 参考文献 | 第68-80页 |
| 发表文章 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
