| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 绪论 | 第18-30页 |
| 1.1 石油及海洋石油污染现状 | 第18-20页 |
| 1.1.1 石油组分 | 第18页 |
| 1.1.2 全球海洋石油污染现状 | 第18-19页 |
| 1.1.3 中国海洋石油污染现状 | 第19-20页 |
| 1.2 溢油事故与海洋环境 | 第20-22页 |
| 1.2.1 大型溢油事故及其危害 | 第20页 |
| 1.2.2 溢油事故对海洋沉积物的影响 | 第20-21页 |
| 1.2.3 溢油事故对海岸带的影响 | 第21页 |
| 1.2.4 舟山海域溢油风险 | 第21-22页 |
| 1.3 采油废水及其处理方法 | 第22-24页 |
| 1.3.1 采油废水的产生、组分及危害 | 第22-23页 |
| 1.3.2 采油废水的处理方法 | 第23-24页 |
| 1.4 石油污染的生物修复 | 第24-27页 |
| 1.4.1 生物修复的优势与局限性 | 第24页 |
| 1.4.2 海洋石油烃污染的生物修复方法 | 第24-25页 |
| 1.4.3 常见石油烃降解微生物及其降解特性 | 第25-26页 |
| 1.4.4 石油烃降解功能基因及其研究意义 | 第26-27页 |
| 1.5 研究的目的、意义及技术路线 | 第27-30页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第27-28页 |
| 1.5.2 研究意义 | 第28-29页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第29-30页 |
| 2 舟山近海海水与底质石油烃污染调查 | 第30-52页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 材料和方法 | 第30-35页 |
| 2.2.1 样品采集 | 第30-31页 |
| 2.2.2 样品萃取 | 第31-32页 |
| 2.2.3 紫外分光光度法分析样品石油类含量 | 第32页 |
| 2.2.4 GC-MS分析样品中烷烃与PAHs含量 | 第32-35页 |
| 2.2.5 数据分析 | 第35页 |
| 2.3 结果 | 第35-49页 |
| 2.3.1 海水理化因子 | 第35-38页 |
| 2.3.2 近海与潮间带样品石油类含量 | 第38-45页 |
| 2.3.3 潮间带样品PAHs与烷烃浓度 | 第45-49页 |
| 2.4 讨论 | 第49-50页 |
| 2.5 小结 | 第50-52页 |
| 3 微生物制剂降解石油烃的实验室模拟 | 第52-72页 |
| 3.1 微生物制剂修复船舶用油与清舱油泥污染海水 | 第52-60页 |
| 3.1.1 引言 | 第52页 |
| 3.1.2 材料和方法 | 第52-54页 |
| 3.1.2.1 石油烃降解菌群驯化 | 第52页 |
| 3.1.2.2 菌群的原油降解效果测定 | 第52-53页 |
| 3.1.2.3 菌剂的制作及其质量鉴定 | 第53页 |
| 3.1.2.4 菌剂降解常用船舶用油与船舶清舱油泥的实验室模拟 | 第53-54页 |
| 3.1.3 实验结果 | 第54-59页 |
| 3.1.3.1. 船舶用油与船舶洗舱油泥中PAHs的降解效果 | 第54-56页 |
| 3.1.3.2 船舶用油与船舶洗舱油泥中烷烃的降解效果 | 第56-59页 |
| 3.1.4 讨论 | 第59页 |
| 3.1.5 小结 | 第59-60页 |
| 3.2 微生物制剂实验室模拟修复船舶清舱油泥污染海岸带 | 第60-72页 |
| 3.2.1 引言 | 第60页 |
| 3.2.2 材料与方法 | 第60-62页 |
| 3.2.2.1 模拟修复船舶清舱油泥污染潮上带 | 第60-61页 |
| 3.2.2.2 模拟修复船舶清舱油泥污染潮间带 | 第61-62页 |
| 3.2.2.3 模拟修复船舶清舱油泥污染潮下带 | 第62页 |
| 3.2.3 结果 | 第62-70页 |
| 3.2.3.1 潮上带模拟修复结果 | 第62-63页 |
| 3.2.3.2 潮间带模拟修复结果 | 第63-68页 |
| 3.2.3.3 潮下带模拟修复结果 | 第68-70页 |
| 3.2.4 讨论 | 第70-71页 |
| 3.2.5 小结 | 第71-72页 |
| 4 石油烃降解菌株的分离纯化与降解功能基因研究 | 第72-97页 |
| 4.1 石油烃降解菌株分离纯化 | 第72-80页 |
| 4.1.1 引言 | 第72页 |
| 4.1.2 材料与方法 | 第72-74页 |
| 4.1.2.1 石油烃降解菌的筛选、分离、纯化及鉴定 | 第72-73页 |
| 4.1.2.2 菌株降解底物范围评估 | 第73-74页 |
| 4.1.2.3 石油烃降解相关实验 | 第74页 |
| 4.1.3 结果 | 第74-78页 |
| 4.1.3.1 石油烃降解菌分离与鉴定结果 | 第74-75页 |
| 4.1.3.2 菌株石油烃降解能力与产表面活性剂能力 | 第75-78页 |
| 4.1.4 讨论 | 第78-79页 |
| 4.1.5 小结 | 第79-80页 |
| 4.2 Leclercia sp.B45石油烃降解功能基因 | 第80-90页 |
| 4.2.1 引言 | 第80页 |
| 4.2.2 材料和方法 | 第80-83页 |
| 4.2.2.1 底物浓度的优化 | 第80-81页 |
| 4.2.2.2 降解相关功能基因的扩增与测序 | 第81-82页 |
| 4.2.2.3 正构烷烃诱导的alkBs基因的转录模式 | 第82-83页 |
| 4.2.3 结果 | 第83-87页 |
| 4.2.3.1 菌株B45信息 | 第83页 |
| 4.2.3.2 Leclercia sp B45的石油烃降解范围 | 第83-84页 |
| 4.2.3.3 最佳烷烃降解浓度 | 第84页 |
| 4.2.3.4 石油烃降解功能基因的PCR扩增结果 | 第84-85页 |
| 4.2.3.5 Leclercia sp.B45的alkB基因的转录模式 | 第85-87页 |
| 4.2.4 讨论 | 第87-89页 |
| 4.2.5 小结 | 第89-90页 |
| 4.3 Halomonas sp. A2烃类降解及相关基因的转录特征 | 第90-97页 |
| 4.3.1 引言 | 第90-91页 |
| 4.3.2 材料与方法 | 第91-93页 |
| 4.3.2.1 Halomonas sp. A2的烷烃降解实验 | 第91-92页 |
| 4.3.2.2 Halomonas sp. A2单加氧酶序列选取及引物设计 | 第92页 |
| 4.3.2.3 分析正癸烷诱导下的单加氧酶基因的转录水平 | 第92-93页 |
| 4.3.3 结果 | 第93-95页 |
| 4.3.3.1 Halomonas sp. A2的进化树 | 第93页 |
| 4.3.3.2 Halomonas sp. A2烷烃降解浓度优化结果 | 第93-95页 |
| 4.3.3.3 Halomonas sp. A2中单加氧酶基因转录水平 | 第95页 |
| 4.3.4 讨论 | 第95-96页 |
| 4.3.5 小结 | 第96-97页 |
| 5 微生物制剂应用于降解高含盐采油废水 | 第97-116页 |
| 5.1 引言 | 第97页 |
| 5.2 材料与方法 | 第97-100页 |
| 5.2.1 采油废水处理站 | 第97-99页 |
| 5.2.2 菌粉的制作 | 第99页 |
| 5.2.3 菌粉现场活化与投放 | 第99页 |
| 5.2.4 微生物膜样品采集 | 第99-100页 |
| 5.2.5 高通量测序 | 第100页 |
| 5.3 结果 | 第100-110页 |
| 5.3.1 采油废水水质检测结果 | 第100-101页 |
| 5.3.2 菌粉活化及降解效果 | 第101-102页 |
| 5.3.3 挂膜与试运行效果 | 第102-103页 |
| 5.3.4 微生物接触式氧化池处理效果 | 第103-105页 |
| 5.3.5 微生物膜的细菌群落结构 | 第105-108页 |
| 5.3.6 微生物膜的真菌群落结构 | 第108-110页 |
| 5.4 讨论 | 第110-115页 |
| 5.5 小结 | 第115-116页 |
| 6 结论 | 第116-118页 |
| 6.1 主要研究结论 | 第116页 |
| 6.2 创新点 | 第116-117页 |
| 6.3 论文不足与研究展望 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-139页 |
| 作者筒介 | 第139页 |
