| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-34页 |
| 1.1 化学发光分析 | 第12-19页 |
| 1.1.1 化学发光机理 | 第12-13页 |
| 1.1.2 化学发光类型 | 第13-14页 |
| 1.1.3 化学发光类物质 | 第14-15页 |
| 1.1.4 化学发光与流动注射技术的联用 | 第15-17页 |
| 1.1.5 化学发光分析法在生化分析中的应用 | 第17-19页 |
| 1.2 信号放大技术 | 第19-23页 |
| 1.2.1 金纳米粒子 | 第19页 |
| 1.2.2 磁性微球 | 第19-20页 |
| 1.2.3 滚环复制放大 | 第20-23页 |
| 1.3 拉曼光谱分析 | 第23-28页 |
| 1.3.1 拉曼光谱工作原理 | 第23-24页 |
| 1.3.2 拉曼光谱仪组成 | 第24-25页 |
| 1.3.3 表面增强拉曼光谱分析 | 第25-26页 |
| 1.3.4 表面增强拉曼光谱在生物分析中的应用 | 第26-28页 |
| 1.4 立题依据及主要内容 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-34页 |
| 第2章 基于滚环复制信号放大与流动注射化学发光技术检测DNA的研究 | 第34-50页 |
| 2.1 引言 | 第34页 |
| 2.2 实验部分 | 第34-37页 |
| 2.2.1 试剂及仪器 | 第34-35页 |
| 2.2.2 发卡DNA修饰的MB的制备 | 第35-36页 |
| 2.2.3 滚环复制放大（RCA）步骤 | 第36页 |
| 2.2.4 流动注射化学发光检测 | 第36-37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-47页 |
| 2.3.1 设计方案及工作原理 | 第37-39页 |
| 2.3.2 磁性微球及其固定DNA后的表征 | 第39-40页 |
| 2.3.3 滚环复制产物的凝胶电泳表征 | 第40页 |
| 2.3.4 过氧化物模拟酶（四分体）形成的验证实验 | 第40-41页 |
| 2.3.5 实验条件的优化 | 第41-44页 |
| 2.3.5.1 滚环复制反应时间的选择 | 第42页 |
| 2.3.5.2 缓冲溶液p H的影响 | 第42-43页 |
| 2.3.5.3 H_2O_2浓度对Luminol-H_2O_2体系化学发光强度的影响 | 第43-44页 |
| 2.3.5.4 Luminol浓度对Luminol-H2O2体系化学发光强度的影响 | 第44页 |
| 2.3.5.5 流动注射流速对Luminol-H_2O_2体系化学发光强度的影响 | 第44页 |
| 2.3.6 对照实验 | 第44-45页 |
| 2.3.7 靶DNA浓度的检测 | 第45-46页 |
| 2.3.8 实验方案的选择性研究 | 第46-47页 |
| 2.4 小结 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 第3章 基于滚环复制信号放大与生物条码技术的SERS光谱检测DNA的研究 | 第50-67页 |
| 3.1 引言 | 第50页 |
| 3.2 实验部分 | 第50-53页 |
| 3.2.1 试剂及仪器 | 第50-51页 |
| 3.2.2 金纳米粒子的制备 | 第51-52页 |
| 3.2.3 生物条码的制备 | 第52页 |
| 3.2.4 发卡DNA修饰的MB的制备 | 第52页 |
| 3.2.5 滚环复制放大（RCA）步骤 | 第52-53页 |
| 3.2.6 表面增强拉曼光谱检测靶DNA | 第53页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第53-64页 |
| 3.3.1 设计方案及工作原理 | 第53-54页 |
| 3.3.2 金纳米粒子的表征 | 第54-56页 |
| 3.3.2.1 金纳米粒子的紫外光谱表征 | 第55页 |
| 3.3.2.2 金纳米粒子的TEM表征 | 第55-56页 |
| 3.3.3 生物条码的紫外表征 | 第56-57页 |
| 3.3.4 对照实验 | 第57-58页 |
| 3.3.5 实验条件的优化 | 第58-62页 |
| 3.3.5.1 ROX-DNA浓度的优化 | 第58-59页 |
| 3.3.5.2 生物条码中捕获探针DNA与ROX-DNA比例的优化 | 第59-60页 |
| 3.3.5.3 切刻内切酶反应温度的优化 | 第60-61页 |
| 3.3.5.4 切刻内切酶反应时间的优化 | 第61-62页 |
| 3.3.6 靶DNA浓度的检测 | 第62-63页 |
| 3.3.7 实验方案的选择性研究 | 第63-64页 |
| 3.3.8 SERS与FI-CL的比较 | 第64页 |
| 3.4 小结 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-67页 |
| 第4章 基于循环放大与生物条码技术的SERS光谱检测溶菌酶方法的研究 | 第67-79页 |
| 4.1 引言 | 第67-68页 |
| 4.2 实验部分 | 第68-70页 |
| 4.2.1 试剂及仪器 | 第68-69页 |
| 4.2.2 金纳米粒子的制备 | 第69页 |
| 4.2.3 生物条码的制备 | 第69页 |
| 4.2.4 MB-DNA-生物条码发光探针的组装 | 第69-70页 |
| 4.2.5 循环反应过程 | 第70页 |
| 4.2.6 溶菌酶的SERS检测 | 第70页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第70-76页 |
| 4.3.1 设计方案及工作原理 | 第70-71页 |
| 4.3.2 实验条件的优化选择 | 第71-75页 |
| 4.3.2.1 生物条码用量的选择 | 第72页 |
| 4.3.2.2 溶菌酶适体DNA浓度的优化 | 第72-73页 |
| 4.3.2.3 溶菌酶反应温度的控制 | 第73-74页 |
| 4.3.2.4 聚合酶用量的选择 | 第74-75页 |
| 4.3.3 循环放大的实验验证 | 第75页 |
| 4.3.4 实验方案的选择性研究 | 第75-76页 |
| 4.4 小结 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 结论 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第81-82页 |
