| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第10-13页 |
| 1.1 前言 | 第13-16页 |
| 1.2 材料与方法 | 第16-37页 |
| 1.2.1 主要实验仪器设备 | 第16-17页 |
| 1.2.2 小鼠肝脏去细胞技术 | 第17-18页 |
| 1.2.3 糖尿病小鼠模型的制备 | 第18页 |
| 1.2.4 小鼠脾细胞单细胞悬液制备 | 第18-19页 |
| 1.2.5 小鼠CD4+细胞分离 | 第19-20页 |
| 1.2.6 小鼠CD62L+细胞分离 | 第20-21页 |
| 1.2.7 小鼠树突状细胞体外诱导模型 | 第21-22页 |
| 1.2.8 小鼠CD11c+树突状细胞分离 | 第22-23页 |
| 1.2.9 小鼠胰岛细胞分离 | 第23-25页 |
| 1.2.10 同种异基因小鼠胰岛细胞移植 | 第25-26页 |
| 1.2.11 淋巴细胞混合培养体系 | 第26-27页 |
| 1.2.12 同种异基因T细胞激活反应 | 第27-28页 |
| 1.2.13 去细胞肝脏支架病理学检测 | 第28-29页 |
| 1.2.14 免疫组织荧光染色 | 第29-31页 |
| 1.2.15 细胞培养上清液TNF-a测定 | 第31-32页 |
| 1.2.16 细胞培养上清液IL-2测定 | 第32-33页 |
| 1.2.17 细胞培养上清液IFN-γ测定 | 第33-34页 |
| 1.2.18 肝脏去细胞支架电镜扫描 | 第34-35页 |
| 1.2.19 流式细胞检测CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞 | 第35-36页 |
| 1.2.20 流式细胞检测T细胞凋亡 | 第36页 |
| 1.2.21 统计分析 | 第36-37页 |
| 1.3 结果 | 第37-46页 |
| 1.3.1 去细胞肝脏支架的生物学特性 | 第37-38页 |
| 1.3.2 去细胞肝脏支架保留了肝脏的细胞外基质和3D结构 | 第38-41页 |
| 1.3.3 去细胞肝脏支架具有极低的免疫原性 | 第41-42页 |
| 1.3.4 去细胞肝脏支架能有效抑制T细胞激活 | 第42-44页 |
| 1.3.5 去细胞肝脏支架能有抑制同种异基因T细胞反应 | 第44页 |
| 1.3.6 去细胞肝脏支架改善胰岛移植物的存活 | 第44-46页 |
| 1.4 讨论 | 第46-49页 |
| 1.5 结论 | 第49-50页 |
| 1.6 参考文献 | 第50-56页 |
| 综述一 | 第56-72页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 综述二 | 第72-91页 |
| 参考文献 | 第77-91页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第91页 |
