摘要 | 第4-9页 |
Abstract | 第9-13页 |
英文缩略语 | 第14-18页 |
1 前言 | 第18-21页 |
2 材料和方法 | 第21-27页 |
2.1 实验用鼠 | 第21页 |
2.2 主要试剂 | 第21-22页 |
2.3 实验仪器 | 第22页 |
2.4 实验方法 | 第22-27页 |
2.4.1 疟原虫感染小鼠模型的建立 | 第22页 |
2.4.2 脾细胞悬液的制备 | 第22-23页 |
2.4.3 表面抗体染色和流式细胞术检测 | 第23页 |
2.4.4 转录因子Foxp3标记与检测 | 第23页 |
2.4.5 细胞因子的标记与检测 | 第23-24页 |
2.4.6 ELISA检测血清中抗体的滴度 | 第24页 |
2.4.7 ELISA检测脾细胞培养上清中细胞因子水平 | 第24-25页 |
2.4.8 脾细胞总RNA提取 | 第25页 |
2.4.9 RNA质量的检测 | 第25页 |
2.4.10 RNA逆转录与cDNA的合成 | 第25-26页 |
2.4.11 荧光定量PCR检测T-bet以及PD-1基因的表达 | 第26页 |
2.4.12 体外实验 | 第26页 |
2.4.13 统计学结果分析 | 第26-27页 |
3 结果 | 第27-46页 |
3.1 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠的生存率以及疟原虫血症水平 | 第27-28页 |
3.1.1 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠的生存率 | 第27页 |
3.1.2 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠的疟原虫血症水平 | 第27-28页 |
3.2 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠对树突状细胞的变化情况 | 第28-33页 |
3.2.1 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后mDC细胞比例和绝对数量的变化 | 第28-30页 |
3.2.2 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后pDC细胞比例和绝对数量的变化 | 第30-31页 |
3.2.3 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后树突状细胞的活化情况 | 第31-32页 |
3.2.4 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后树突状细胞表面TLR分子的表达 | 第32-33页 |
3.3 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后巨噬细胞比例的变化 | 第33-34页 |
3.4 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后效应性T细胞的免疫应答 | 第34-36页 |
3.4.1 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后脾脏Th1细胞比例和绝对数量及转录因子水平 | 第34-36页 |
3.4.2 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后脾细胞培养上清IFN-γ的变化 | 第36页 |
3.5 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠调节性T细胞免疫调节作用 | 第36-40页 |
3.5.1 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后调节性T细胞的变化 | 第37-38页 |
3.5.2 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后IL-10表达水平的变化 | 第38页 |
3.5.3 P.y17XL和P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后T细胞表面PD-1的表达 | 第38-40页 |
3.6 P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠体液免疫应答情况 | 第40-44页 |
3.6.1 P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后脾脏Th2细胞比例、绝对数量和细胞因子IL-4表达水平 | 第40-41页 |
3.6.2 P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后滤泡辅助性T细胞比例和绝对数量 | 第41-42页 |
3.6.3 P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠后分泌IgG的浆细胞和记忆性B细胞检测 | 第42-44页 |
3.6.4 P.y17XNL感染不同周龄BALB/c小鼠产生保护性抗体水平的检测 | 第44页 |
3.7 不同周龄BALB/c小鼠脾细胞的体外刺激实验 | 第44-46页 |
4 讨论 | 第46-53页 |
5 结论 | 第53-54页 |
本研究创新性的自我评价 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-60页 |
综述 | 第60-81页 |
参考文献 | 第69-81页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第81-82页 |
致谢 | 第82-83页 |
个人简历 | 第83页 |