| 摘要 | 第6-9页 |
| abstract | 第9-12页 |
| 缩写表 | 第17-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-27页 |
| 1.1 问题的提出 | 第18页 |
| 1.2 蛋白适度酶解研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3 蛋白改性辅助酶解研究进展 | 第19-20页 |
| 1.4 多肽制备过程原位实时监测研究进展 | 第20页 |
| 1.5 本研究的立题意义和主要研究内容 | 第20-23页 |
| 1.5.1 立题背景及意义 | 第20-21页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第21-23页 |
| 参考文献 | 第23-27页 |
| 第二章 超声辅助淀粉降解法对大米蛋白提取效果的影响 | 第27-45页 |
| 2.1 试验材料与仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.1 试验材料与试剂 | 第28页 |
| 2.1.2 试验仪器与设备 | 第28-29页 |
| 2.2 试验方法 | 第29-32页 |
| 2.2.1 大米蛋白提取体系pH值确定 | 第29页 |
| 2.2.2 超声辅助淀粉降解法提取大米蛋白试验 | 第29-30页 |
| 2.2.3 蛋白和淀粉含量测定 | 第30页 |
| 2.2.4 傅里叶变换红外光谱分析 | 第30-31页 |
| 2.2.5 氨基酸分析 | 第31页 |
| 2.2.6 SDS-PAGE试验 | 第31页 |
| 2.2.7 大米蛋白溶解度测定 | 第31页 |
| 2.2.8 大米蛋白乳化活性和乳化稳定性测定 | 第31-32页 |
| 2.2.9 大米蛋白发泡能力和发泡稳定性测定 | 第32页 |
| 2.3 数据处理 | 第32页 |
| 2.4 结果分析 | 第32-40页 |
| 2.4.1 大米蛋白提取过程中pH值的确定 | 第32-33页 |
| 2.4.2 超声辅助淀粉降解法对大米蛋白提取率的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.3 超声辅助淀粉降解法对所提取大米蛋白的蛋白含量和淀粉含量的影响 | 第34-35页 |
| 2.4.4 超声辅助淀粉降解法对大米蛋白傅里叶红外光谱的影响 | 第35-36页 |
| 2.4.5 超声辅助淀粉降解法对大米蛋白氨基酸组成的影响 | 第36-37页 |
| 2.4.6 超声辅助淀粉降解法对大米蛋白SDS-PAGE的影响 | 第37-38页 |
| 2.4.7 超声辅助淀粉降解法对大米蛋白溶解度的影响 | 第38-39页 |
| 2.4.8 超声辅助淀粉降解法对大米蛋白乳化性和乳化稳定性的影响 | 第39-40页 |
| 2.4.9 超声辅助淀粉降解法对大米蛋白起泡能力和起泡稳定性的影响 | 第40页 |
| 2.5 讨论 | 第40-41页 |
| 2.6 本章小结 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-45页 |
| 第三章 大分子大米多肽制备体系的建立 | 第45-69页 |
| 3.1 引言 | 第45-46页 |
| 3.2 试验材料与仪器 | 第46页 |
| 3.2.1 试验材料与试剂 | 第46页 |
| 3.2.2 试验仪器与设备 | 第46页 |
| 3.3 试验方法 | 第46-49页 |
| 3.3.1 蛋白酶酶活的测定 | 第46页 |
| 3.3.2 蛋白酶的筛选及最佳水解度的确定 | 第46-47页 |
| 3.3.3 胃肠模拟消化试验 | 第47页 |
| 3.3.4 ACE抑制率的测定 | 第47-48页 |
| 3.3.5 大米蛋白酶解条件的优化 | 第48页 |
| 3.3.6 大分子大米多肽中多肽含量、ACE抑制率和IC50值的测定 | 第48页 |
| 3.3.7 大分子大米多肽的相对分子量分布试验 | 第48-49页 |
| 3.3.8 具有ACE抑制活性的大分子大米多肽概念的确定 | 第49页 |
| 3.4 数据处理 | 第49-50页 |
| 3.5 结果分析 | 第50-65页 |
| 3.5.1 蛋白酶酶活的测定结果 | 第50页 |
| 3.5.2 不同蛋白酶对大分子大米多肽制备效果的影响 | 第50-55页 |
| 3.5.3 不同工艺参数对大分子大米多肽制备效果的影响 | 第55-59页 |
| 3.5.4 蛋白酶解参数响应面试验结果分析 | 第59-63页 |
| 3.5.5 大分子大米多肽的多肽含量、ACE抑制率和IC50值 | 第63页 |
| 3.5.6 大分子大米多肽的相对分子量分布 | 第63-64页 |
| 3.5.7 具有ACE抑制活性的大分子大米多肽的定义 | 第64-65页 |
| 3.6 讨论 | 第65-66页 |
| 3.7 本章小结 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-69页 |
| 第四章 超声预处理辅助制备大分子大米多肽的试验研究 | 第69-91页 |
| 4.1 引言 | 第69-70页 |
| 4.2 试验材料与仪器 | 第70页 |
| 4.2.1 试验材料与试剂 | 第70页 |
| 4.2.2 试验仪器与设备 | 第70页 |
| 4.3 试验方法 | 第70-75页 |
| 4.3.1 超声预处理工作模式的优化 | 第70-73页 |
| 4.3.2 蛋白酶解反应及ACE抑制活性的测定 | 第73页 |
| 4.3.3 超声预处理工作参数的确定 | 第73页 |
| 4.3.4 超声预处理参数对蛋白结构的影响 | 第73-75页 |
| 4.3.5 超声预处理对具有ACE抑制活性的大分子大米多肽的影响 | 第75页 |
| 4.4 数据处理 | 第75页 |
| 4.5 结果分析 | 第75-85页 |
| 4.5.1 不同超声波设备预处理对制备大分子大米多肽的影响 | 第75-80页 |
| 4.5.2 超声波工艺参数对制备大分子大米多肽的影响 | 第80-82页 |
| 4.5.3 超声波工艺参数对大米蛋白结构的影响 | 第82-85页 |
| 4.5.4 超声预处理对具有ACE抑制活性的大分子大米多肽的影响 | 第85页 |
| 4.6 讨论 | 第85-86页 |
| 4.7 本章小结 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-91页 |
| 第五章 大分子大米多肽制备过程的原位实时监测 | 第91-103页 |
| 5.1 引言 | 第91页 |
| 5.2 试验材料与仪器设备 | 第91-92页 |
| 5.2.1 试验材料及试剂 | 第91-92页 |
| 5.2.2 试验仪器及设备 | 第92页 |
| 5.3 试验方法 | 第92-93页 |
| 5.3.1 大分子大米多肽制备过程的光谱信息采集体系的建立 | 第92-93页 |
| 5.3.2 拉曼光谱信息预处理方法的选择 | 第93页 |
| 5.3.3 Si-PLS模型最佳光谱区间的筛选及模型的建立 | 第93页 |
| 5.4 数据处理 | 第93-94页 |
| 5.5 结果分析 | 第94-100页 |
| 5.5.1 物料浓度对蛋白水解度的影响 | 第94页 |
| 5.5.2 物料浓度对蛋白酶解产物经胃肠消化后ACE抑制率的影响 | 第94-95页 |
| 5.5.3 不同光谱预处理方法对所建立模型的影响 | 第95-97页 |
| 5.5.4 目标参数定量模型的建立 | 第97-100页 |
| 5.6 讨论 | 第100-101页 |
| 5.7 本章小结 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-103页 |
| 第六章 大分子大米多肽的降血压功效研究 | 第103-119页 |
| 6.1 前言 | 第103页 |
| 6.2 试验材料与仪器设备 | 第103-104页 |
| 6.2.1 试验材料及试剂 | 第103页 |
| 6.2.2 试验仪器及设备 | 第103-104页 |
| 6.3 试验方法 | 第104-107页 |
| 6.3.1 样品制备 | 第104页 |
| 6.3.2 急性毒性试验 | 第104页 |
| 6.3.3 消化吸收试验 | 第104-105页 |
| 6.3.4 体内降血压活性试验 | 第105-106页 |
| 6.3.5 主要器官ACE酶活测定 | 第106页 |
| 6.3.6 血清指标测定 | 第106-107页 |
| 6.4 数据处理 | 第107页 |
| 6.5 结果分析 | 第107-114页 |
| 6.5.1 大分子大米多肽对小鼠急性经口毒性试验的影响 | 第107页 |
| 6.5.2 大分子大米多肽经过消化吸收后血液中多肽含量的测定 | 第107-108页 |
| 6.5.3 大分子大米多肽对SHR血压的影响 | 第108-111页 |
| 6.5.4 长期灌胃大分子大米多肽对SHR器官ACE酶活的影响 | 第111-112页 |
| 6.5.5 长期灌胃大分子大米多肽对SHR脏器指数的影响 | 第112页 |
| 6.5.6 长期灌胃大分子大米多肽对SHR血清指标的影响 | 第112-114页 |
| 6.6 讨论 | 第114-115页 |
| 6.7 本章小结 | 第115-117页 |
| 参考文献 | 第117-119页 |
| 第七章 结论与展望 | 第119-122页 |
| 7.1 主要结论 | 第119-120页 |
| 7.2 本论文的主要创新点 | 第120-121页 |
| 7.3 展望 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
| 攻读博士学位期间科研成果情况 | 第123-126页 |
