| 缩略词表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 绪论 | 第12-14页 |
| 第一部分 云南臭蛙皮肤cathelicidin的结构与功能 | 第14-51页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 材料与方法 | 第16-22页 |
| 1 云南臭蛙样本采集与动物处理 | 第16页 |
| 2 皮肤分泌物的分离纯化 | 第16页 |
| 3 多肽一级结构的确 | 第16-17页 |
| 4 cDNA文库的构建 | 第17页 |
| 5 多肽合成 | 第17页 |
| 6 抗氧化活性检测 | 第17-18页 |
| 7 抗菌活性检测 | 第18页 |
| 8 细胞水平促创伤修复活性检测 | 第18-19页 |
| 9 Cathelicidin-OA1对HaCaT和HSF细胞的促增殖活性检测 | 第19页 |
| 10 动物水平促创伤修复活性检测 | 第19页 |
| 11 创伤愈合的测量 | 第19-20页 |
| 12 组织标本的取材和染色分析 | 第20页 |
| 13 免疫调节活性检测 | 第20-21页 |
| 14 溶血活性检测 | 第21页 |
| 15 急性毒性实验 | 第21页 |
| 16 统计学处理 | 第21-22页 |
| 结果 | 第22-45页 |
| 1 Cathelicidin-OA1的分离纯化 | 第22-24页 |
| 2 Cathelicidin-OA1的一级结构 | 第24-27页 |
| 3 Cathelicidin-OA1的抗氧化活性 | 第27-30页 |
| 4 Cathelicidin-OA1的抗菌活性 | 第30-31页 |
| 5 Cathelicidin-OA1促进HaCaT细胞的创伤修复 | 第31-34页 |
| 6 Cathelicidin-OA1促进HSF细胞的创伤修复 | 第34-37页 |
| 7 Cathelicidin-OA1在动物模型上的促创伤修复活性 | 第37-40页 |
| 8 Cathelicidin-OA1的免疫调节活性 | 第40-44页 |
| 9 Cathelicidin-OA1溶血活性及急性毒性 | 第44-45页 |
| 讨论 | 第45-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-51页 |
| 第二部分 两栖动物抗氧化肽的结构与功能 | 第51-74页 |
| 前言 | 第51-53页 |
| 材料与方法 | 第53-56页 |
| 1 臭蛙样本的采集与动物处理 | 第53页 |
| 2 皮肤分泌物的分离纯化 | 第53页 |
| 3 皮肤抗氧化肽一级结构的确定 | 第53-54页 |
| 4 皮肤cDNA文库的构建 | 第54页 |
| 5 多肽的合成 | 第54页 |
| 6 抗氧化活性检测 | 第54-55页 |
| 7 统计学处理 | 第55-56页 |
| 结果 | 第56-69页 |
| 1 抗氧化肽的分离纯化 | 第56-58页 |
| 2 抗氧化肽的一级结构 | 第58-61页 |
| 3 抗氧化活性 | 第61-69页 |
| 3.1 ABTS自由基清除活性 | 第61-64页 |
| 3.2 DPPH自由基清除活性 | 第64-66页 |
| 3.3 Fe~(3+)自由基清除活性 | 第66-67页 |
| 3.4 NO自由基清除活性 | 第67-69页 |
| 讨论 | 第69-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-74页 |
| 综述 | 第74-86页 |
| 参考文献 | 第83-86页 |
| 攻读学位期间获得的学术成果 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
