摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
缩略语表 | 第11-13页 |
第1章 绪论 | 第13-23页 |
1.1 暗纹东方鲀的研究及养殖现状 | 第13-15页 |
1.1.1 暗纹东方鲀的生物学特征及研究现状 | 第13-14页 |
1.1.2 暗纹东方鲀的养殖及产业现状 | 第14-15页 |
1.2 水体低氧的产生原因 | 第15-16页 |
1.3 水体低氧对鱼类行为、存活及生理生化的影响 | 第16-18页 |
1.3.1 低氧对鱼类行为和存活的影响 | 第16-17页 |
1.3.2 低氧对鱼类能量代谢的影响 | 第17页 |
1.3.3 低氧对鱼类血液指标的影响 | 第17-18页 |
1.4 鱼类低氧应答相关基因研究进展 | 第18-21页 |
1.4.1 低氧感受信号通路 | 第18-19页 |
1.4.2 低氧调控相关基因 | 第19-21页 |
1.5 本论文研究目的、意义和主要内容 | 第21-23页 |
1.5.1 本论文研究目的和意义 | 第21页 |
1.5.2 本研究的主要内容 | 第21-22页 |
1.5.3 技术路线 | 第22-23页 |
第2章 低氧胁迫和恢复对暗纹东方鲀氧气传感蛋白基因表达的影响 | 第23-35页 |
2.1 引言 | 第23页 |
2.2 材料与方法 | 第23-29页 |
2.2.1 实验材料、仪器与试剂 | 第23-24页 |
2.2.2 暗纹东方鲀的浮头点与窒息点的测定 | 第24-25页 |
2.2.3 低氧胁迫处理及样本采集 | 第25-26页 |
2.2.4 总RNA的提取及荧光定量方法 | 第26-29页 |
2.3 结果与分析 | 第29-32页 |
2.3.1 暗纹东方鲀的浮头点与窒息点 | 第29-30页 |
2.3.2 HIF-1α、VHL和PHD2基因的组织分布 | 第30页 |
2.3.3 在低氧及恢复条件下暗纹东方鲀HIF-1α、VHL和PHD2基因的时序表达分析 | 第30-32页 |
2.4 讨论 | 第32-35页 |
第3章 低氧胁迫和恢复对暗纹东方鲀能量代谢的影响 | 第35-53页 |
3.1 引言 | 第35页 |
3.2 材料与方法 | 第35-39页 |
3.2.1 实验仪器材料与试剂 | 第35-36页 |
3.2.2 低氧胁迫处理及样本采集 | 第36页 |
3.2.3 总RNA的提取及荧光定量方法 | 第36-37页 |
3.2.4 酶活性检测 | 第37-38页 |
3.2.5 蛋白质免疫印迹 | 第38页 |
3.2.6 数据处理与分析 | 第38-39页 |
3.3 结果与分析 | 第39-50页 |
3.3.1 GLUT2、HK、PGK1、PGAM2、MDH1、CS和LDH基因的组织分布 | 第39-41页 |
3.3.2 低氧胁迫和恢复下暗纹东方鲀GLUT2、HK、PGK1、PGAM2、MDH1、CS和LDH基因的时序表达分析 | 第41-45页 |
3.3.3 HK、MDH1和LDH酶活的变化规律 | 第45-47页 |
3.3.4 PGK1、PGAM2和MDH1蛋白的时序表达分析 | 第47-50页 |
3.4 讨论 | 第50-53页 |
第4章 低氧胁迫和恢复对暗纹东方鲀血液指标的影响 | 第53-62页 |
4.1 引言 | 第53页 |
4.2 材料与方法 | 第53-55页 |
4.2.1 实验仪器材料与试剂 | 第53页 |
4.2.2 低氧胁迫处理及样本采集 | 第53页 |
4.2.3 总RNA的提取及荧光定量方法 | 第53-54页 |
4.2.4 血液指标检测 | 第54页 |
4.2.5 蛋白质免疫印迹 | 第54-55页 |
4.2.6 数据处理与分析 | 第55页 |
4.3 结果与分析 | 第55-60页 |
4.3.1 EPO和VEGF-A基因的组织分布 | 第55-56页 |
4.3.2 低氧胁迫和恢复下暗纹东方鲀EPO和VEGF-A基因的时序表达分析 | 第56-57页 |
4.3.3 血液指标参数的时序变化 | 第57-59页 |
4.3.4 VEGF-A蛋白的时序表达分析 | 第59-60页 |
4.4 讨论 | 第60-62页 |
第5章 小结与展望 | 第62-64页 |
5.1 小结 | 第62-63页 |
5.2 展望 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-77页 |
在读期间发表的学术论文与研究成果 | 第77-78页 |
获奖 | 第78-79页 |
致谢 | 第79页 |