| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-19页 |
| 1.1 AsA的生物学功能 | 第8-9页 |
| 1.1.1 AsA在植物逆境胁迫时的抵御作用 | 第8页 |
| 1.1.2 AsA在细胞活动中的作用 | 第8-9页 |
| 1.1.3 AsA对某些酶的辅助作用 | 第9页 |
| 1.1.4 AsA在植物信号转导传递过程中的作用 | 第9页 |
| 1.2 AsA的生物合成途径及代谢 | 第9-14页 |
| 1.2.1 L-半乳糖途径 | 第10-11页 |
| 1.2.2 D-半乳糖醛酸途径 | 第11页 |
| 1.2.3 古洛糖途径 | 第11-12页 |
| 1.2.4 可能的肌醇途径 | 第12-13页 |
| 1.2.5 合成途径的共存性 | 第13页 |
| 1.2.6 AsA在植物细胞内的氧化还原及分解 | 第13-14页 |
| 1.3 AsA合成酶相关基因的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3.1 GDP-D-甘露糖 3’,5’-差向异构酶(GDP-mannose-3',5'-epimerase，GME) | 第14-15页 |
| 1.3.2 GDP-D-甘露糖焦磷酸化酶(GDP-D-Manpyrophosphorylase，GMPase) | 第15页 |
| 1.3.3 L-半乳糖1磷酸磷酸酶 (L-galactose phosphatase，GPP) | 第15-16页 |
| 1.3.4 D-半乳糖醛酸还原酶(D-galacturonic acid reductase，GalUR) | 第16页 |
| 1.4 果树AsA相关研究进展 | 第16-17页 |
| 1.5 毛花猕猴桃AsA相关研究进展 | 第17-18页 |
| 1.6 本论文研究的目的与意义 | 第18-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-24页 |
| 2.1 材料 | 第19页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 试验试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 试验仪器 | 第19页 |
| 2.2 方法 | 第19-24页 |
| 2.2.1 引物的设计与合成 | 第19-20页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第20-24页 |
| 第三章 结果与分析 | 第24-43页 |
| 3.1 毛花猕猴桃果实RNA的提取 | 第24页 |
| 3.2 GalUR基因的克隆 | 第24-28页 |
| 3.2.1 GalUR基因的扩增 | 第24页 |
| 3.2.2 GalUR基因序列全长及生物信息学分析 | 第24-28页 |
| 3.3 GME基因的克隆 | 第28-33页 |
| 3.3.1 GME基因的扩增 | 第28页 |
| 3.3.2 GME基因序列全长及生物信息学分析 | 第28-33页 |
| 3.4 GMP基因的克隆 | 第33-37页 |
| 3.4.1 GMP基因的扩增 | 第33页 |
| 3.4.2 GMP基因序列全长及生物信息学分析 | 第33-37页 |
| 3.5 GPP基因片段的克隆 | 第37-38页 |
| 3.5.1 GPP基因片段的扩增 | 第37页 |
| 3.5.2 GPP基因片段序列及生物信息学分析 | 第37-38页 |
| 3.6 毛花猕猴桃发育过程中AsA含量及相关酶活性的变化 | 第38-39页 |
| 3.6.1 毛花猕猴桃果实发育过程中AsA含量变化 | 第38页 |
| 3.6.2 毛花猕猴桃果实发育过程中GalLDH及APX酶活性变化 | 第38-39页 |
| 3.7 毛花猕猴桃发育过程中AsA相关合成酶基因的定量表达 | 第39-43页 |
| 3.7.1 D-半乳糖醛酸途径相关合成酶基因的表达 | 第39-40页 |
| 3.7.2 L-半乳糖途径相关合成酶基因的表达 | 第40-43页 |
| 第四章 讨论 | 第43-46页 |
| 4.1 关于毛花猕猴桃RNA的提取 | 第43页 |
| 4.2 GalUR、GME和GMP基因克隆的意义 | 第43-44页 |
| 4.3 毛花猕猴桃AsA合成相关酶基因定量表达 | 第44-46页 |
| 第五章 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 缩略词表 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简历 | 第58页 |
