| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-20页 |
| 1.1 多肽蛋白类药物分类 | 第12页 |
| 1.2 口服多肽蛋白类药物纳米给药系统 | 第12-16页 |
| 1.2.1 纳米给药系统优势 | 第13-14页 |
| 1.2.2 纳米载体制备方法 | 第14页 |
| 1.2.3 纳米载体的性质 | 第14-15页 |
| 1.2.4 口服胰岛素纳米给药载体分类 | 第15-16页 |
| 1.3 糖尿病 | 第16-17页 |
| 1.4 糖尿病治疗途径 | 第17-18页 |
| 1.4.1 侵入性治疗 | 第17页 |
| 1.4.2 非侵入性治疗 | 第17-18页 |
| 1.5 研究课题的提出及实验内容 | 第18-20页 |
| 1.5.1 研究课题的提出 | 第18页 |
| 1.5.2 课题的主要工作内容 | 第18-20页 |
| 第二章 羧甲基-β-环糊精接枝壳聚糖聚合物的制备与表征 | 第20-26页 |
| 2.1 引言 | 第20-21页 |
| 2.1.1 壳聚糖理化性质 | 第20页 |
| 2.1.2 羧甲基-β-环糊精理化性质 | 第20-21页 |
| 2.2 试剂与仪器 | 第21-22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22页 |
| 2.3.1 CMCD-g-CS的合成制备 | 第22页 |
| 2.3.2 CMCD-g-CS的结构表征 | 第22页 |
| 2.3.2.1 FTIR | 第22页 |
| 2.3.2.2 ~1HNMR | 第22页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第22-25页 |
| 2.4.1 CMCD-g-CS合成制备 | 第22-23页 |
| 2.4.2 CMCD-g-CS结构特征 | 第23-25页 |
| 2.4.2.1 FTIR | 第23-24页 |
| 2.4.2.2 ~1HNMR | 第24-25页 |
| 2.5 本章小结 | 第25-26页 |
| 第三章 CMCD-g-CSNPs的制备与表征 | 第26-29页 |
| 3.1 引言 | 第26页 |
| 3.2 试剂与仪器 | 第26-27页 |
| 3.3 实验方法 | 第27页 |
| 3.3.1 CMCD-g-CSNPs的制备 | 第27页 |
| 3.3.2 CMCD-g-CSNPs的表征 | 第27页 |
| 3.3.2.1 CMCD-g-CSNPs透射电镜观察 | 第27页 |
| 3.3.2.2 CMCD-g-CSNPs粒径观察 | 第27页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第27-28页 |
| 3.4.1 CMCD-g-CSNPs透射电镜图与粒径分布 | 第27-28页 |
| 3.5 本章小结 | 第28-29页 |
| 第四章 CMCD-g-CSNPs载体对BSA模拟药物的包载与释放 | 第29-35页 |
| 4.1 引言 | 第29页 |
| 4.2 试剂与仪器 | 第29-30页 |
| 4.3 实验方法 | 第30-31页 |
| 4.3.1 BSA/CMCD-g-CSNPs载药量与包封率 | 第30-31页 |
| 4.3.2 BSA/CMCD-g-CSNPs体外释放实验 | 第31页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第31-34页 |
| 4.4.1 BSA/CMCD-g-CSNPs载药量与包封率分析 | 第31-32页 |
| 4.4.2 BSA/CMCD-g-CSNPs体外释放实验分析 | 第32-33页 |
| 4.4.3 药物释放动力学机制分析 | 第33-34页 |
| 4.5 本章小结 | 第34-35页 |
| 第五章 Insulin/CMCD-g-CSNPs的合成、包载及释放 | 第35-41页 |
| 5.1 引言 | 第35页 |
| 5.2 试剂与仪器 | 第35-36页 |
| 5.3 实验方法 | 第36-38页 |
| 5.3.1 FITC标记胰岛素 | 第36页 |
| 5.3.2 Insulin/CMCD-g-CSNPs的合成 | 第36-37页 |
| 5.3.3 Insulin/CMCD-g-CSNPs载药量和包封率测定 | 第37-38页 |
| 5.3.4 Insulin/CMCD-g-CSNPs的体外释放实验 | 第38页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第38-40页 |
| 5.4.1 FITC修饰Insulin效率 | 第38-39页 |
| 5.4.2 Insulin/CMCD-g-CSNPs载药量和包封率 | 第39-40页 |
| 5.4.3 Insulin/CMCD-g-CSNPs体外累积释放 | 第40页 |
| 5.5 本章小结 | 第40-41页 |
| 第六章 Insulin/CMCD-g-CSNPs的体外细胞实验 | 第41-50页 |
| 6.1 引言 | 第41-42页 |
| 6.2 试剂与仪器 | 第42-43页 |
| 6.3 实验方法 | 第43-46页 |
| 6.3.1 Caco-2细胞培养 | 第43页 |
| 6.3.2 CMCD-g-CSNPs的细胞毒性实验 | 第43页 |
| 6.3.3 Caco-2细胞摄取实验 | 第43-44页 |
| 6.3.4 紧密连接蛋白可视化实验 | 第44-45页 |
| 6.3.5 Westernblotanalysis | 第45-46页 |
| 6.3.5.1 目的蛋白提取 | 第45页 |
| 6.3.5.2 Westernblot | 第45-46页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第46-49页 |
| 6.4.1 细胞毒性实验分析 | 第46页 |
| 6.4.2 细胞摄取实验分析 | 第46-47页 |
| 6.4.3 细胞紧密连接可视化分析 | 第47-48页 |
| 6.4.4 Westernblotanalysis | 第48-49页 |
| 6.5 本章小结 | 第49-50页 |
| 第七章 糖尿病小鼠的Insulin/CMCD-g-CSNPs降血糖研究 | 第50-57页 |
| 7.1 引言 | 第50页 |
| 7.2 试剂与仪器 | 第50-51页 |
| 7.3 实验方法 | 第51-53页 |
| 7.3.1 构建糖尿病小鼠模型 | 第51-52页 |
| 7.3.2 Insulin/CMCD-g-CSNPs降血糖药效研究 | 第52页 |
| 7.3.3 Insulin生物利用度研究 | 第52页 |
| 7.3.4 Insulin/CMCD-g-CSNPs对小鼠肝功能影响 | 第52-53页 |
| 7.4 结果与讨论 | 第53-56页 |
| 7.4.1 糖尿病小鼠血糖变化值分析 | 第53页 |
| 7.4.2 降血糖作用 | 第53-54页 |
| 7.4.3 胰岛素生物利用度分析 | 第54-55页 |
| 7.4.4 小鼠肝功能数据分析 | 第55-56页 |
| 7.5 本章小结 | 第56-57页 |
| 全文总结 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69页 |
