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蛋白质酪氨酸磷酸酶MEG1催化结构域的克隆、可溶性表达及酶学性质的研究

摘要第4-6页
abstract第6-7页
第一章 前言第13-29页
    1.1 蛋白质的可逆磷酸化第13-19页
        1.1.1 蛋白质的可逆磷酸化概述第13-14页
        1.1.2 蛋白质酪氨酸磷酸酶催化机制第14-15页
        1.1.3 蛋白质酪氨酸磷酸酶相关疾病及治疗第15-19页
    1.2 PTP-MEG1简介第19-22页
        1.2.1 PTP-MEG1研究现状第19-21页
        1.2.2 △PTP-MEG1基因cDNA及氨基酸序列第21-22页
    1.3 FKBP简介第22-27页
        1.3.1 FKBP概述第22-23页
        1.3.2 几种重要的FKBPs及相关疾病第23-25页
        1.3.3 FKBP-C在目的蛋白表达过程中的作用第25-26页
        1.3.4 FKBP-C基因cDNA及氨基酸序列第26-27页
    1.4 本实验的研究思路与意义第27-29页
第二章 △PTP-MEG1&FKBP-C载体的构建第29-38页
    2.1 实验材料第29-32页
        2.1.1 实验仪器第29-30页
        2.1.2 实验试剂第30页
        2.1.3 试剂配制第30-32页
    2.2 实验方法第32-36页
        2.2.1 基本分子生物学实验方法第32页
        2.2.2 基因克隆及表达载体的构建第32-36页
    2.3 实验结果第36-37页
        2.3.1 △PTP-MEG1基因片段的扩增第36-37页
        2.3.2 重组质粒的双酶切鉴定第37页
    2.4 本章小结第37-38页
第三章 ΔPTP-MEG1蛋白的表达与分离纯化第38-47页
    3.1 实验材料第38-42页
        3.1.1 实验仪器第38-39页
        3.1.2 实验试剂第39页
        3.1.3 试剂配制第39-42页
    3.2 实验方法第42-44页
        3.2.1 目的蛋白的诱导表达第42页
        3.2.2 目的蛋白的粗提取第42页
        3.2.3 Ni柱亲和层析第42-43页
        3.2.4 His6-ΔPTP-MEG1蛋白的特异性分析第43-44页
    3.3 实验结果第44-46页
        3.3.1 目的蛋白的粗提取第44页
        3.3.2 Ni柱亲和层析纯化后的蛋白质电泳第44-45页
        3.3.3 His6-ΔPTP-MEG1的特异性分析第45-46页
    3.4 本章小结第46-47页
第四章 ΔPTP-MEG1的酶学表征第47-53页
    4.1 实验方法第47-49页
        4.1.1 酶活力的测定第47页
        4.1.2 最适pH值的测定第47-48页
        4.1.3 最适温度的测定第48页
        4.1.4 最适离子强度的测定第48页
        4.1.5 Km值的测定第48-49页
    4.2 实验结果第49-51页
        4.2.1 酶活力第49页
        4.2.2 最适pH值第49页
        4.2.3 最适温度第49-50页
        4.2.4 最适离子强度第50页
        4.2.5 Km值第50-51页
    4.3 本章小结第51-53页
第五章 △cKIT&FKBP-C载体的构建及表达第53-59页
    5.1 cKIT克隆的背景及意义第53页
    5.2 实验材料第53-54页
        5.2.1 实验仪器第53-54页
        5.2.2 实验试剂第54页
        5.2.3 试剂配制第54页
    5.3 实验方法第54-56页
        5.3.1 基本分子生物学实验方法第54页
        5.3.2 基因克隆及表达载体的构建第54-55页
        5.3.3 目的蛋白的诱导表达第55页
        5.3.4 目的蛋白的粗提取第55-56页
    5.4 实验结果第56-58页
        5.4.1 △cKIT基因片段的扩增第56页
        5.4.2 重组质粒的双酶切鉴定第56-57页
        5.4.3 目的蛋白的粗提取第57-58页
    5.5 本章小结第58-59页
全篇总结第59-60页
参考文献第60-68页
致谢第68页

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