| 摘要 | 第12-13页 |
| Abstract | 第13页 |
| 第一章 前言 | 第14-41页 |
| 1.1 过敏 | 第14-25页 |
| 1.1.1 过敏的背景知识 | 第14-15页 |
| 1.1.2 肥大细胞 | 第15-17页 |
| 1.1.3 肥大细胞的生长、分化和存活 | 第17-20页 |
| 1.1.4 肥大细胞的活性和介质的产生 | 第20-21页 |
| 1.1.5 肥大细胞在生理和病理中的作用 | 第21页 |
| 1.1.6 肥大细胞和IgE在过敏性疾病中的作用 | 第21-23页 |
| 1.1.7 肥大细胞中的信号机制 | 第23-25页 |
| 1.2 环氧二烯 | 第25-26页 |
| 1.3 核受体 | 第26-27页 |
| 1.4 核受体辅调节子 | 第27-30页 |
| 1.4.1 辅激活子(coactivator) | 第28-29页 |
| 1.4.2 辅抑制子(corepressor) | 第29-30页 |
| 1.5 类固醇激素受体辅激活子家族(SRC家族) | 第30-39页 |
| 1.5.1 类固醇激素及其受体 | 第30页 |
| 1.5.2 类固醇激素受体辅激活子家族分类 | 第30-31页 |
| 1.5.3 类固醇激素受体辅激活子基因的表达 | 第31-32页 |
| 1.5.4 类固醇激素受体辅激活子基因定位和结构 | 第32-34页 |
| 1.5.5 类固醇激素受体辅激活子家族的生物学功能 | 第34-39页 |
| 1.5.5.1 SRC-1 | 第34页 |
| 1.5.5.2 SRC-2 | 第34-35页 |
| 1.5.5.3 SRC-3 | 第35-37页 |
| 1.5.5.4 SRC-3功能的分子机制 | 第37-39页 |
| 1.6 本文立题背景、内容和意义 | 第39-41页 |
| 第二章 材料和方法 | 第41-58页 |
| 2.1 材料 | 第41-44页 |
| 2.1.1 细胞与小鼠 | 第41页 |
| 2.1.1.1 细胞 | 第41页 |
| 2.1.1.2 小鼠 | 第41页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第41-43页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第43-44页 |
| 2.2 方法 | 第44-58页 |
| 2.2.1 RNA相关实验及方法 | 第44-46页 |
| 2.2.1.1 RNA的提取 | 第44页 |
| 2.2.1.2 反转录合成cDNA | 第44-45页 |
| 2.2.1.3 实时荧光定量PCR(Real-time PCR) | 第45-46页 |
| 2.2.2 蛋白质相关实验及方法 | 第46-48页 |
| 2.2.2.1 蛋白质样品制备 | 第46页 |
| 2.2.2.2 蛋白质浓度测定(BCA法) | 第46页 |
| 2.2.2.3 蛋白质的SDS-PAGE电泳及Western blotting分析 | 第46-48页 |
| 2.2.3 细胞相关实验及方法 | 第48-52页 |
| 2.2.3.1 小鼠原代细胞的提取及培养 | 第48-49页 |
| 2.2.3.2 细胞毒性实验(MTT法) | 第49页 |
| 2.2.3.3 细胞计数 | 第49-50页 |
| 2.2.3.4 β-己糖胺酶释放的测定 | 第50-51页 |
| 2.2.3.5 细胞因子释放的测定 | 第51页 |
| 2.2.3.6 ELISA方法测量细胞因子 | 第51-52页 |
| 2.2.3.7 细胞因子mRNA水平的检测 | 第52页 |
| 2.2.3.8 细胞表面分子流式细胞仪检测 | 第52页 |
| 2.2.4 动物相关实验及方法 | 第52-58页 |
| 2.2.4.1 小鼠尾部基因组DNA的提取及基因的鉴定 | 第52-54页 |
| 2.2.4.2 小鼠过敏模型 | 第54-55页 |
| 2.2.4.3 组织切片及苏木精-伊红(H&E)染色和甲苯胺蓝(ToluidinebIue,TB)染色 | 第55-58页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第58-86页 |
| 3.1 MED在过敏中的作用 | 第58-70页 |
| 3.1.1 MED对BMMCs细胞没有毒性作用 | 第58页 |
| 3.1.2 体外诱导肥大细胞BMMCs的形成 | 第58-59页 |
| 3.1.3 MED抑制抗原刺激引起的肥大细胞脱颗粒 | 第59-60页 |
| 3.1.4 MED明显抑制抗原刺激引起的肥大细胞产生炎症因子量 | 第60-61页 |
| 3.1.5 在激活的肥大细胞中,MED可以通过抑制Syk的播酸化进而抑制PLCyl、Akt和MAPKs的活性 | 第61-65页 |
| 3.1.6 MED明显抑制IgE介导的被动皮肤过敏反应(PCA) | 第65-69页 |
| 3.1.7 讨论 | 第69-70页 |
| 3.2 SRC-3在过敏中的作用 | 第70-86页 |
| 3.2.1 不同基因型小鼠的骨髓源性肥大细胞诱导过程中无差异 | 第70-71页 |
| 3.2.2 野生型小鼠和SRC-3基因敲除的小鼠在动物过敏模型中的情况 | 第71-80页 |
| 3.2.2.1 野生型小鼠和SRC-3基因敲除的小鼠在被动系统性过敏反应模型中的情况 | 第71-72页 |
| 3.2.2.2 野生型小鼠和SRC-3基因敲除的小鼠在被动皮肤过敏反应模型中的情况 | 第72-76页 |
| 3.2.2.3 野生型小鼠和SRC-3基因敲除的小鼠在DNFB诱导过敏反应模型中的情况 | 第76-80页 |
| 3.2.3 SRC-3对抗原刺激BMMC脱颗粒产生的影响 | 第80-81页 |
| 3.2.4 SRC-3对抗原刺激BMMC炎症因子产生的影响 | 第81-82页 |
| 3.2.5 SRC-3在抗原刺激激活的肥大细胞BMMC作用的分子机制 | 第82-84页 |
| 3.2.6 讨论 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-103页 |
| 图表索引 | 第103-105页 |
| 缩略语及中英文对照 | 第105-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 在学期间发表和待发表论文 | 第109页 |
