| 致谢 | 第5-6页 |
| 序言 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 目录 | 第16-19页 |
| 1 引言 | 第19-42页 |
| 1.1 湿地微生物氮素循环及其意义 | 第19-21页 |
| 1.1.1 湿地的生态功能与分类 | 第19-20页 |
| 1.1.2 湿地氮循环的意义与主要生物过程 | 第20-21页 |
| 1.2 ANAMMOX与N-DAMO反应的发现及其生态学意义 | 第21-22页 |
| 1.2.1 ANAMMOX与N-DAMO反应的发现 | 第21-22页 |
| 1.2.2 ANAMMOX与N-DAMO反应的生态学意义 | 第22页 |
| 1.3 ANAMMOX与N-DAMO微生物及其生化反应机理 | 第22-28页 |
| 1.3.1 ANAMMOX微生物及其生化反应机理 | 第22-26页 |
| 1.3.2 N-DAMO微生物及其生化反应机理 | 第26-28页 |
| 1.4 ANAMMOX和N-DAMO微生物生态学研究现状 | 第28-39页 |
| 1.4.1 ANAMMOX微生物生态学研究现状 | 第28-36页 |
| 1.4.2 N-DAMO微生物生态学研究现状 | 第36-39页 |
| 1.5 论文研究目标及基本思路 | 第39-42页 |
| 2 淡水湿地ANAMMOX菌群落组成、多样性、数量和活性研究 | 第42-80页 |
| 前言 | 第42页 |
| 2.1 材料与方法 | 第42-49页 |
| 2.1.1 取样区状况及取样点设置 | 第42-46页 |
| 2.1.2 理化因子测定 | 第46页 |
| 2.1.3 DNA抽提与PCR扩增 | 第46-47页 |
| 2.1.4 克隆与测序 | 第47页 |
| 2.1.5 定量PCR | 第47-48页 |
| 2.1.6 系统发育分析 | 第48页 |
| 2.1.7 生物统计学分析 | 第48页 |
| 2.1.8 稳定同位素活性示踪 | 第48-49页 |
| 2.2 结果 | 第49-74页 |
| 2.2.1 钱塘江沉积物ANAMMOX菌群落组成、多样性和数量 | 第49-54页 |
| 2.2.2 下渚湖湿地ANAMMOX菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第54-62页 |
| 2.2.3 水稻田湿地ANAMMOX菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第62-67页 |
| 2.2.4 西溪湿地ANAMMOX菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第67-74页 |
| 2.3 讨论 | 第74-78页 |
| 2.3.1 淡水湿地系统ANAMMOX菌的群落结构分析 | 第74-75页 |
| 2.3.2 淡水湿地系统ANAMMOX菌的数量分析 | 第75-76页 |
| 2.3.3 淡水湿地系统ANAMMOX菌的活性及其在氮循环中的作用分析 | 第76-78页 |
| 2.4 小结 | 第78-80页 |
| 3 淡水湿地N-DAMO菌群落组成、多样性、数量和活性研究 | 第80-112页 |
| 3.1 材料与方法 | 第80-83页 |
| 3.1.1 取样区状况及取样点设置 | 第80页 |
| 3.1.2 理化因子测定 | 第80页 |
| 3.1.3 DNA抽提与PCR扩增 | 第80-82页 |
| 3.1.4 克隆与测序 | 第82页 |
| 3.1.5 定量PCR | 第82页 |
| 3.1.6 系统发育分析 | 第82页 |
| 3.1.7 生物统计学分析 | 第82页 |
| 3.1.8 稳定同位素活性示踪 | 第82-83页 |
| 3.2 结果 | 第83-106页 |
| 3.2.1 钱塘江沉积物N-DAMO菌群落组成、多样性和数量 | 第83-88页 |
| 3.2.2 下渚湖湿地N-DAMO菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第88-95页 |
| 3.2.3 水稻田湿地N-DAMO菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第95-100页 |
| 3.2.4 西溪湿地N-DAMO菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第100-106页 |
| 3.3 讨论 | 第106-110页 |
| 3.3.1 淡水湿地N-DAMO菌的群落结构分析 | 第106-108页 |
| 3.3.2 淡水湿地N-DAMO菌的数量分析 | 第108页 |
| 3.3.3 淡水湿地N-DAMO菌的活性及其在甲烷氧化中的作用分析 | 第108-110页 |
| 3.4 小结 | 第110-112页 |
| 4 滨海湿地ANAMMOX菌群落组成、多样性、数量和活性研究 | 第112-141页 |
| 4.1 材料与方法 | 第112-117页 |
| 4.1.1 取样区状况及取样点设置 | 第112-116页 |
| 4.1.2 理化因子测定 | 第116页 |
| 4.1.3 DNA抽提与PCR扩增 | 第116页 |
| 4.1.4 克隆与测序 | 第116页 |
| 4.1.5 定量PCR | 第116页 |
| 4.1.6 系统发育分析 | 第116-117页 |
| 4.1.7 生物统计学分析 | 第117页 |
| 4.1.8 稳定同位素活性示踪 | 第117页 |
| 4.2 结果 | 第117-133页 |
| 4.2.1 椒江河口ANAMMOX菌群落组成、多样性和数量 | 第117-122页 |
| 4.2.2 舟山海岛潮间带ANAMMOX菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第122-128页 |
| 4.2.3 杭州湾海域ANAMMOX菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第128-133页 |
| 4.3 讨论 | 第133-139页 |
| 4.3.1 滨海湿地ANAMMOX菌的群落结构分析 | 第133-137页 |
| 4.3.2 滨海湿地ANAMMOX菌的数量分析 | 第137页 |
| 4.3.3 滨海湿地系统ANAMMOX菌的活性分析 | 第137-139页 |
| 4.3.4 滨海湿地系统ANAMMOX菌在氮循环和作为无机氮汇中的作用分析 | 第139页 |
| 4.4 小结 | 第139-141页 |
| 5 滨海湿地N-DAMO菌群落组成、多样性、数量和活性研究 | 第141-167页 |
| 5.1 材料与方法 | 第141-143页 |
| 5.1.1 取样区状况及取样点设置 | 第141页 |
| 5.1.2 理化因子测定 | 第141-142页 |
| 5.1.3 DNA抽提与PCR扩增 | 第142页 |
| 5.1.4 克隆与测序 | 第142页 |
| 5.1.5 定量PCR | 第142页 |
| 5.1.6 系统发育分析 | 第142页 |
| 5.1.7 生物统计学分析 | 第142页 |
| 5.1.8 稳定同位素活性示踪 | 第142-143页 |
| 5.2 结果 | 第143-159页 |
| 5.2.1 椒江河口N-DAMO菌群落组成、多样性和数量 | 第143-148页 |
| 5.2.2 舟山海岛潮间带N-DAMO菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第148-154页 |
| 5.2.3 杭州湾海域N-DAMO菌群落组成、多样性、数量和活性 | 第154-159页 |
| 5.3 讨论 | 第159-166页 |
| 5.3.1 滨海湿地系统N-DAMO菌的群落结构分析 | 第159-163页 |
| 5.3.2 滨海湿地系统N-DAMO菌的数量分析 | 第163-164页 |
| 5.3.3 滨海湿地系统N-DAMO菌的活性及其在甲烷氧化中的作用分析 | 第164-166页 |
| 5.4 小结 | 第166-167页 |
| 6 湿地ANAMMOX反应和N-DAMO反应的生态环境效应评价 | 第167-182页 |
| 6.1 通量计算与分析 | 第167-177页 |
| 6.1.1 淡水湿地ANAMMOX反应所致的氮气产生通量 | 第168-169页 |
| 6.1.2 滨海湿地ANAMMOX反应所致的氮气产生通量 | 第169-171页 |
| 6.1.3 淡水湿地N-DAMO反应所致的氮气产生通量 | 第171-172页 |
| 6.1.4 滨海湿地N-DAMO反应所致的氮气产生通量 | 第172-174页 |
| 6.1.5 淡水湿地N-DAMO反应所致的甲烷氧化量 | 第174-175页 |
| 6.1.6 滨海湿地N-DAMO反应所致的甲烷氧化量 | 第175-177页 |
| 6.2 讨论 | 第177-180页 |
| 6.2.1 ANAMMOX与N-DAMO在氮循环和平衡氮收支中的重要意义 | 第177-178页 |
| 6.2.2 ANAMMOX与N-DAMO在缓解水体富营养化中的重要意义 | 第178-179页 |
| 6.2.3 ANAMMOX与N-DAMO在控制温室气体排放中的重要意义 | 第179-180页 |
| 6.3 结论 | 第180-182页 |
| 7 结论与展望 | 第182-187页 |
| 7.1 主要结论 | 第182-185页 |
| 7.2 创新点 | 第185-186页 |
| 7.3 不足与展望 | 第186-187页 |
| 参考文献 | 第187-199页 |
| 个人简历 | 第199-206页 |
| 研究生阶段所取得的科研成果 | 第199-206页 |
| 论文发表情况 | 第199-204页 |
| 专利获得情况 | 第204-206页 |
| 奖励获得情况 | 第206页 |
