| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 绪论 | 第15-25页 |
| 一、细胞因子相关的生物制剂 | 第17-21页 |
| 二、抗T 淋巴细胞特异性生物制剂 | 第21-22页 |
| 三、抗B淋巴细胞特异性生物制剂 | 第22页 |
| 四、其他治疗方法 | 第22-25页 |
| 第一章 抗炎多肽的筛选与合成 | 第25-35页 |
| 1 引言 | 第25-27页 |
| 2 实验材料和方法 | 第27-29页 |
| 2.1 序列 | 第27页 |
| 2.2 计算机分析软件或网站 | 第27页 |
| 2.3 仪器设备 | 第27页 |
| 2.4 合成方法 | 第27-29页 |
| 3 模型和实验结果 | 第29-32页 |
| 3.1 模型 | 第29-30页 |
| 3.2 实验结果 | 第30-32页 |
| 4 讨论 | 第32-35页 |
| 第二章 新型多肽 LS22 抑制炎症的生物活性验证 | 第35-79页 |
| 1 引言 | 第35-39页 |
| 2 实验材料和试剂 | 第39-43页 |
| 2.1 细胞和动物 | 第39页 |
| 2.2 多肽合成试剂 | 第39-40页 |
| 2.3 细胞培养试剂及耗材 | 第40页 |
| 2.4 ELISA 实验试剂及耗材 | 第40页 |
| 2.5 RT-PCR 实验试剂及耗材 | 第40-41页 |
| 2.6 细胞粘附实验试剂及耗材 | 第41页 |
| 2.7 细胞检测试剂及耗材 | 第41页 |
| 2.8 共聚焦显微镜观察试剂及耗材 | 第41页 |
| 2.9 细胞组织病理学检查试剂 | 第41-42页 |
| 2.10 其他试剂 | 第42页 |
| 2.11 细胞实验用试剂 | 第42页 |
| 2.12 动物实验用试剂 | 第42-43页 |
| 3 实验方法 | 第43-57页 |
| 3.1 MTS 检测实验 | 第43-44页 |
| 3.2 ELISA 实验 | 第44-46页 |
| 3.3 RT-PCR 检测 | 第46-49页 |
| 3.4 趋化实验 | 第49-51页 |
| 3.5 粘附实验 | 第51-53页 |
| 3.6 LS22 对 LPS 诱导的大鼠葡萄膜炎的作用 | 第53-57页 |
| 4 统计分析 | 第57页 |
| 5 结果 | 第57-77页 |
| 5.1 MTS 实验测定结果 | 第57-59页 |
| 5.2 ELISA、PCR 实验测定结果 | 第59-66页 |
| 5.3 趋化实验的测定结果 | 第66-67页 |
| 5.4 粘附实验的测定结果 | 第67-69页 |
| 5.5 大鼠 EIU 模型治疗结果 | 第69-77页 |
| 6 讨论 | 第77-79页 |
| 第三章 LS22 抑制炎症的机制研究 | 第79-104页 |
| 1 引言 | 第79-81页 |
| 2 实验材料 | 第81-85页 |
| 2.1 细胞和动物 | 第81页 |
| 2.2 主要试剂 | 第81-84页 |
| 2.3 主要仪器 | 第84-85页 |
| 3 实验方法 | 第85-91页 |
| 3.1 LS22 细胞内荧光定位观察 | 第85-86页 |
| 3.2 LS22 对于 LPS 诱导的 p65 入核的影响 | 第86-89页 |
| 3.3 免疫荧光观察 LS22 对 LPS 诱导的 NF-κB 核转位的影响 | 第89-90页 |
| 3.4 LS22 对 LPS 诱导的 NF-κB 荧光报告基因的影响 | 第90-91页 |
| 4 统计分析 | 第91-92页 |
| 5 实验结果 | 第92-99页 |
| 5.1 多肽序列合成和鉴定 | 第92页 |
| 5.2 LS22 在细胞内作用位点定位 | 第92-94页 |
| 5.3 LS22 抑制 LPS 诱导的核内 NF-κBp65、pp65 的蛋白水平 | 第94-95页 |
| 5.4 LS22 抑制 LPS 诱导的 NF-κBp65、pp65 的核转位 | 第95-98页 |
| 5.5 LS22 抑制报告基因荧光强度 | 第98-99页 |
| 6 讨论 | 第99-104页 |
| 结论 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文和科研成果目录 | 第112-113页 |
