基于SSR分子标记的海棠种质资源分离与鉴定
| 符号说明 | 第4-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1.引言 | 第12-19页 |
| 1.1 海棠概述 | 第12-13页 |
| 1.1.1 海棠简介 | 第12页 |
| 1.1.2 山东常见海棠种类 | 第12-13页 |
| 1.1.3 海棠市场乱象 | 第13页 |
| 1.2 海棠种质资源分离的研究进展 | 第13-15页 |
| 1.2.1 海棠种质分类难的原因 | 第13-14页 |
| 1.2.2 海棠的研究现状 | 第14-15页 |
| 1.3 问题及对策 | 第15-18页 |
| 1.3.1 问题及方法 | 第15-16页 |
| 1.3.2 选定分子标记类型解决问题 | 第16-17页 |
| 1.3.2.1 SSR与其他分子标记技术的比较 | 第16-17页 |
| 1.3.2.2 SSR标记技术在植物研究中的应用 | 第17页 |
| 1.3.3 鉴定种质资源和构建遗传图谱 | 第17-18页 |
| 1.3.3.1 品种鉴定和种质保存 | 第17-18页 |
| 1.3.3.2 指纹图谱的构建 | 第18页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第18-19页 |
| 2.实验材料与方法 | 第19-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-23页 |
| 2.1.1 海棠材料 | 第20-22页 |
| 2.1.2 确定实验引物 | 第22-23页 |
| 2.2 所用仪器设备、试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.3.1 DNA的提取 | 第24-25页 |
| 2.3.1.1 提取DNA | 第24-25页 |
| 2.3.1.2 检验DNA质量 | 第25页 |
| 2.3.2 引物合成 | 第25-26页 |
| 2.3.3 荧光引物PCR扩增 | 第26页 |
| 2.3.3.1 海棠PCR扩增体系的建立与优化 | 第26页 |
| 2.3.3.2 验证优化后体系 | 第26页 |
| 2.3.4 毛细管电泳上机检测 | 第26-27页 |
| 3.结果与分析 | 第27-40页 |
| 3.1 DNA浓度纯度检测： | 第27页 |
| 3.2 优化海棠SSR反应体系 | 第27-28页 |
| 3.2.1 荧光引物PCR扩增体系 | 第27-28页 |
| 3.2.2 PCR扩增验证结果 | 第28页 |
| 3.3 毛细管电泳结果 | 第28-30页 |
| 3.4 海棠材料的遗传多样性分析 | 第30-33页 |
| 3.4.1 遗传多样性评价参数 | 第30-31页 |
| 3.4.2 遗传多样性分析 | 第31-33页 |
| 3.5 海棠材料的聚类分析 | 第33-36页 |
| 3.6 构建海棠种质资源指纹图谱 | 第36-40页 |
| 3.6.1 特异分子标记 | 第36页 |
| 3.6.2 分子标记组合分析 | 第36-40页 |
| 4.讨论 | 第40-44页 |
| 4.1 关于实验中海棠聚类分析的讨论 | 第40-41页 |
| 4.2 引物的鉴别效率 | 第41-42页 |
| 4.3 指纹图谱的构建 | 第42-43页 |
| 4.4 本研究创新及展望 | 第43-44页 |
| 5.结论 | 第44-45页 |
| 5.1 海棠ssr反应体系 | 第44页 |
| 5.2 海棠的遗传多样性 | 第44页 |
| 5.3 海棠指纹图谱 | 第44页 |
| 5.4 海棠种质分类 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 附录 | 第52-56页 |
| 项目资助 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
