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KDM4D和KDM4E在牛受精胚胎发育和体细胞核移植胚胎重编程过程中的作用研究

摘要第6-8页
abstract第8-9页
综述部分第15-36页
    第一章 早期胚胎发育的合子基因组激活第15-25页
        1.1 合子基因组激活的时间第15-17页
        1.2 合子基因组激活的机制第17-22页
            1.2.1 细胞周期和核质比的调控第18页
            1.2.2 染色体结构的调整第18-21页
            1.2.3 转录激活因子和抑制因子第21-22页
            1.2.4 合子基因组激活与母源物质清除的关系第22页
        1.3 合子基因组激活的研究策略第22-25页
    第二章 体细胞核移植与基因组重编程第25-36页
        2.1 体细胞核移植介导的基因组重编程第25-29页
            2.1.1 DNA甲基化第25-26页
            2.1.2 组蛋白替换第26-27页
            2.1.3 组蛋白修饰第27页
            2.1.4 基因组印记第27页
            2.1.5 X染色体失活第27-28页
            2.1.6 端粒长度第28页
            2.1.7 非核物质的细胞重塑第28-29页
            2.1.8 克隆动物的发育异常第29页
        2.2 提高核移植效率的思路和方法第29-36页
            2.2.1 体细胞核移植技术的常规流程第29页
            2.2.2 卵母细胞的采集与培养第29-30页
            2.2.3 卵母细胞的去核操作第30-31页
            2.2.4 供体细胞的选择和制备第31-32页
            2.2.5 染色体移植第32页
            2.2.6 克隆胚胎的激活第32页
            2.2.7 模拟受精的过程第32-33页
            2.2.8 克隆胚胎培养条件的改良第33页
            2.2.9 抑制异常的组蛋白乙酰化第33页
            2.2.10 抑制异常的组蛋白甲基化第33-34页
            2.2.11 抑制异常的DNA甲基化第34页
            2.2.12 抑制克隆胚胎XIST表达第34-36页
实验部分第36-104页
    第三章 牛克隆胚胎上异常的H3K9me3和H3K9me2修饰第36-53页
        3.1 材料和试剂第36-37页
        3.2 方法第37-43页
            3.2.1 胎牛成纤维细胞的分离培养和冻存复苏第37页
            3.2.2 胎牛成纤维细胞的性别鉴定第37页
            3.2.3 供体细胞的准备第37-38页
            3.2.4 卵母细胞的准备第38页
            3.2.5 克隆胚胎的制备第38-39页
            3.2.6 体外受精胚胎的制备第39页
            3.2.7 孤雌激活胚胎的制备第39页
            3.2.8 胚胎转录活性检测第39页
            3.2.9 鹅膏蕈碱的应用第39-40页
            3.2.10 胚胎免疫荧光染色第40页
            3.2.11 胚胎实时荧光定量PCR第40-41页
            3.2.12 亚硫酸氢盐测序PCR第41-43页
        3.3 结果第43-50页
            3.3.1 牛体外受精胚胎、克隆胚胎和孤雌激活胚胎合子基因组激活时期的确定第43-44页
            3.3.2 牛体外受精胚胎、克隆胚胎和孤雌激活胚胎H3K9me3和H3K9me2的变化模式第44-45页
            3.3.3 导致牛克隆胚胎异常H3K9me3和H3K9me2修饰的因子筛选第45-48页
            3.3.4 牛KDM4D和KDM4E差异表达与DNA甲基化的关系第48页
            3.3.5 牛satelliteI差异表达与DNA甲基化的关系第48-50页
        3.4 讨论第50-52页
        3.5 小结第52-53页
    第四章 牛KDM4D和KDM4E去组蛋白甲基化功能的验证第53-64页
        4.1 材料和试剂第53-54页
        4.2 方法第54-56页
            4.2.1 生物信息学分析第54页
            4.2.2 动物组织RNA提取与反转录PCR第54页
            4.2.3 基因扩增与载体构建第54-55页
            4.2.4 细胞培养第55页
            4.2.5 细胞转染第55页
            4.2.6 细胞免疫荧光染色第55页
            4.2.7 蛋白提取第55-56页
            4.2.8 蛋白印迹检测第56页
        4.3 结果第56-61页
            4.3.1 预测牛KDM4D和KDM4E是组蛋白H3K9去甲基化酶第56-58页
            4.3.2 牛KDM4D和KDM4E真核表达载体的构建第58页
            4.3.3 牛KDM4D和KDM4E对细胞核H3K9me3和H3K9me2修饰的影响第58-61页
        4.4 讨论第61-63页
        4.5 小结第63-64页
    第五章 牛KDM4D和KDM4E参与调控早期胚胎发育第64-75页
        5.1 材料和试剂第64页
        5.2 方法第64-67页
            5.2.1 体外受精胚胎的制备第64-65页
            5.2.2 孤雌激活胚胎的制备第65页
            5.2.3 干扰片段的设计与合成第65页
            5.2.4 胚胎显微注射第65页
            5.2.5 胚胎转录活性检测第65页
            5.2.6 胚胎免疫荧光染色第65-66页
            5.2.7 胚胎实时荧光定量PCR第66页
            5.2.8 囊胚凋亡检测第66-67页
            5.2.9 亚硫酸氢盐测序PCR第67页
        5.3 结果第67-71页
            5.3.1 高效干扰KDM4D和KDM4E表达的siRNA筛选第67-68页
            5.3.2 干扰KDM4D和KDM4E表达对胚胎发育率的影响第68页
            5.3.3 干扰KDM4D和KDM4E表达对胚胎H3K9me3和H3K9me2修饰的影响第68-70页
            5.3.4 干扰KDM4D和KDM4E表达对囊胚质量的影响第70页
            5.3.5 干扰KDM4D和KDM4E表达对胚胎合子激活的影响第70-71页
        5.4 讨论第71-74页
        5.5 小结第74-75页
    第六章 牛KDM4D和KDM4E促进克隆胚胎的发育第75-87页
        6.1 材料和试剂第75页
        6.2 方法第75-77页
            6.2.1 体外转录第75-76页
            6.2.2 克隆胚胎的制备第76页
            6.2.3 胚胎显微注射第76-77页
            6.2.4 胚胎转录活性检测第77页
            6.2.5 胚胎免疫荧光染色第77页
            6.2.6 胚胎实时荧光定量PCR第77页
            6.2.7 囊胚凋亡检测第77页
            6.2.8 亚硫酸氢盐测序PCR第77页
            6.2.9 克隆胚胎的移植和检测第77页
        6.3 结果第77-84页
            6.3.1 体外转录牛KDM4D和KDM4E表达载体的构建第77-78页
            6.3.2 过表达KDM4D和KDM4E对克隆胚胎发育率的影响第78-79页
            6.3.3 过表达KDM4D和KDM4E对克隆胚胎H3K9me3和H3K9me2修饰的影响第79-80页
            6.3.4 过表达KDM4D和KDM4E对克隆囊胚质量的影响第80页
            6.3.5 过表达KDM4D和KDM4E对克隆胚胎合子激活的影响第80-83页
            6.3.6 过表达KDM4D和KDM4E对克隆胚胎体内发育的影响第83-84页
        6.4 讨论第84-86页
        6.5 小结第86-87页
    第七章 牛KDM4E对克隆胚胎合子激活时期转录水平的调整第87-104页
        7.1 材料和试剂第87页
        7.2 方法第87-89页
            7.2.1 体外受精胚胎的制备第87页
            7.2.2 克隆胚胎的制备第87页
            7.2.3 干扰片段的设计与合成第87页
            7.2.4 体外转录第87-88页
            7.2.5 胚胎显微注射第88页
            7.2.6 转录组测序样品的收集第88页
            7.2.7 转录组测序数据的过滤和参考基因组的比对第88页
            7.2.8 新转录本的预测第88-89页
            7.2.9 基因表达量和数据相关性分析第89页
            7.2.10 差异表达基因分析与展示第89页
        7.3 结果第89-102页
            7.3.1 转录组测序样品的质量控制第89页
            7.3.2 转录组测序数据的过滤和比对第89-92页
            7.3.3 新转录本的预测第92页
            7.3.4 基因表达量的统计第92-93页
            7.3.5 转录组数据样品间的相关性分析第93-94页
            7.3.6 组间差异表达基因的分析与展示第94-101页
            7.3.7 过表达KDM4E再次激活转录的下游基因验证第101-102页
        7.4 讨论第102-103页
        7.5 小结第103-104页
全文结论第104-105页
参考文献第105-124页
附录第124-136页
缩略词第136-141页
致谢第141-142页
作者简介第142-143页

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