| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-21页 |
| 1.1 十字花科植物根肿病的研究进展 | 第12-16页 |
| 1.1.1 十字花科植物根肿病的发生 | 第12页 |
| 1.1.2 十字花科植物根肿病的症状识别 | 第12页 |
| 1.1.3 十字花科植物根肿病的病原及生物学特性 | 第12-13页 |
| 1.1.4 十字花科植物根肿病的寄主 | 第13页 |
| 1.1.5 病原菌的侵染方式与发病规律 | 第13-14页 |
| 1.1.6 十字花科植物根肿病菌致病性分化 | 第14页 |
| 1.1.7 十字花科不同作物的抗性反应 | 第14页 |
| 1.1.8 十字花科植物根肿病菌的检测 | 第14-16页 |
| 1.2 十字花科植物根肿病的防治研究 | 第16-17页 |
| 1.2.1 十字花科植物根肿病的防治研究现状 | 第16-17页 |
| 1.2.2 种衣剂 | 第17页 |
| 1.3 壳聚糖抗菌活性及机制研究进展 | 第17-19页 |
| 1.3.1 壳聚糖在农业中应用研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3.2 壳聚糖的抑菌性 | 第18-19页 |
| 1.3.3 壳聚糖/纳米TiO_2复合材料研究进展 | 第19页 |
| 1.4 研究内容与目的意义 | 第19-21页 |
| 第二章 十字花科植物根肿病的生防细菌筛选及种衣剂研制 | 第21-46页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-30页 |
| 2.1.1 供试菌株 | 第21-22页 |
| 2.1.2 拮抗菌的室内活菌筛选 | 第22-23页 |
| 2.1.3 温室初筛 | 第23页 |
| 2.1.4 促生作用及毒力测定 | 第23-24页 |
| 2.1.5 温室复筛 | 第24页 |
| 2.1.6 拮抗细菌的鉴定 | 第24-27页 |
| 2.1.7 种衣剂的配制 | 第27-30页 |
| 2.2 结果与分析 | 第30-43页 |
| 2.2.1 活菌拮抗能力筛选结果 | 第31-32页 |
| 2.2.2 温室初筛结果 | 第32-34页 |
| 2.2.3 生防菌促生能力及毒力测定 | 第34-35页 |
| 2.2.4 温室复筛结果 | 第35页 |
| 2.2.5 生防菌鉴定结果 | 第35-38页 |
| 2.2.5.1 形态及主要生物学特征 | 第35-37页 |
| 2.2.5.2 分子生物学鉴定 | 第37-38页 |
| 2.2.6 种衣剂研制及活性测定结果 | 第38-39页 |
| 2.2.7 种衣剂对大白菜种子促生作用的测定结果 | 第39-40页 |
| 2.2.8 生防菌存活力测试 | 第40页 |
| 2.2.9 防御酶活力测定 | 第40-43页 |
| 2.3 讨论 | 第43-45页 |
| 2.4 小结 | 第45-46页 |
| 第三章 壳聚糖及壳聚糖/纳米TIO_2复合物对十字花科植物根肿病的防治研究 | 第46-55页 |
| 3.1 材料和方法 | 第46-48页 |
| 3.1.1 供试菌株 | 第46页 |
| 3.1.2 壳聚糖母液的配置 | 第46页 |
| 3.1.3 壳聚糖/纳米TiO_2复合材料配置 | 第46-47页 |
| 3.1.4 壳聚糖/纳米TiO_2复合材料红外光谱特性 | 第47页 |
| 3.1.5 壳聚糖、壳聚糖/纳米TiO_2复合材料对大白菜种子和油菜种子发芽的影响 | 第47页 |
| 3.1.6 壳聚糖、壳聚糖/纳米TiO_2复合材料对根肿菌休眠孢子萌发的影响 | 第47-48页 |
| 3.1.7 壳聚糖、壳聚糖/纳米TiO_2复合材料对大白菜种苗生长的影响 | 第48页 |
| 3.1.8 壳聚糖、壳聚糖/纳米TiO_2复合材料对大白菜根肿病的影响 | 第48页 |
| 3.2 结果分析 | 第48-53页 |
| 3.2.1 壳聚糖/纳米TiO_2复合材料红外光谱分析 | 第48-49页 |
| 3.2.2 壳聚糖、壳聚糖/纳米TiO_2复合材料对大白菜种子和油菜种子发芽试验的结果 | 第49-50页 |
| 3.2.3 壳聚糖、壳聚糖/纳米TiO_2复合材料对根肿菌休眠孢子萌发的结果 | 第50-51页 |
| 3.2.4 壳聚糖、壳聚糖/纳米TiO_2复合材料对大白菜种苗生长的影响 | 第51-52页 |
| 3.2.5 壳聚糖、壳聚糖/纳米TiO_2复合材料对大白菜根肿病的结果 | 第52-53页 |
| 3.3 讨论 | 第53-54页 |
| 3.4 小结 | 第54-55页 |
| 第四章 FT-IR、RT-PCR检测十字花科植物根肿菌 | 第55-65页 |
| 4.1 试验材料 | 第55页 |
| 4.1.1 菌株 | 第55页 |
| 4.1.2 主要试剂(盒)、酶、引物等 | 第55页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第55页 |
| 4.2 FTIR检测十字花科植物根肿菌 | 第55-56页 |
| 4.3 REAL-TIME PCR(RT-PCR)检测十字花科植物根肿菌 | 第56-58页 |
| 4.3.1 土壤基因组DNA的提取及基因扩增 | 第56页 |
| 4.3.2 PCR产物的质检 | 第56页 |
| 4.3.3 PCR产物与pGEM-T载体连接 | 第56-57页 |
| 4.3.4 大肠杆菌感受态的制备 | 第57页 |
| 4.3.5 细胞转化 | 第57页 |
| 4.3.6 菌落PCR验证 | 第57页 |
| 4.3.7 质粒DNA的提取及验证 | 第57页 |
| 4.3.8 RT-PCR扩增和标准曲线的绘制 | 第57-58页 |
| 4.3.9 RT-PCR检测人工接种根肿菌土壤 | 第58页 |
| 4.4 结果与分析 | 第58-63页 |
| 4.4.1 FTIR检测西兰花根、叶组织根肿菌结果 | 第58-61页 |
| 4.4.2 以含根肿菌特异性基因的质粒为模板进行RT-PCR分析 | 第61-63页 |
| 4.5 讨论 | 第63-64页 |
| 4.6 小结 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 作者简介 | 第70-71页 |
