| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 缩略词简表 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第12-13页 |
| 2 材料与方法 | 第13-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第13-17页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第13-14页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第14-15页 |
| 2.1.3 主要试剂配置方法 | 第15-17页 |
| 2.1.4 实验所用动物 | 第17页 |
| 2.2 实验方法及步骤 | 第17-22页 |
| 2.2.1 实验性动物模型的建立、分组及药物干预 | 第17-18页 |
| 2.2.2 留取小鼠标本 | 第18页 |
| 2.2.3 免疫组化检测糖尿病小鼠海马组织p-Tau的表达 | 第18-20页 |
| 2.2.4 HE染色观察小鼠海马组织形态学改变 | 第20页 |
| 2.2.5 Western bloting检测小鼠海马组织p-mTOR、p-p70S6K及p-Tau的表达 | 第20-22页 |
| 2.3 统计方法 | 第22-23页 |
| 2.4 实验流程图 | 第23-24页 |
| 3 实验结果 | 第24-29页 |
| 3.1 实验动物的一般情况及存活率 | 第24页 |
| 3.2 实验动物的血糖、体重的比较 | 第24页 |
| 3.3 HE染色观察小鼠海马组织形态学改变 | 第24-25页 |
| 3.4 免疫组化染色检测小鼠海马组织p-Tau的表达 | 第25页 |
| 3.5 Western bloting检测小鼠海马组织p-Tau的表达 | 第25-26页 |
| 3.6 Western bloting检测小鼠海马组织p-mTOR及p-p70S6K的表达 | 第26-29页 |
| 4 讨论 | 第29-32页 |
| 4.1 1型糖尿病动物模型建立 | 第29页 |
| 4.2 Tau蛋白磷酸化水平在糖尿病小鼠海马组织中的变化 | 第29页 |
| 4.3 mTOR信号通路在糖尿病小鼠海马组织中的变化 | 第29-30页 |
| 4.4 mTOR信号通路的激活与Tau蛋白异常磷酸化的关系 | 第30-32页 |
| 5 结论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 综述 | 第36-50页 |
| 参考文献 | 第43-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
