| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 缩略语表 | 第15-17页 |
| 第一章 前言 | 第17-43页 |
| 1.1 作物对太阳能的固定及作物产量形成的理论基础 | 第19-22页 |
| 1.1.1 作物产量的形成 | 第19-20页 |
| 1.1.2 叶片的光能转化效率 | 第20-21页 |
| 1.1.3 呼吸消耗 | 第21-22页 |
| 1.2 Rubisco酶对光合速率的限制 | 第22-24页 |
| 1.3 气孔导度对光合速率的限制 | 第24-28页 |
| 1.3.1 气孔发育的调节 | 第25-26页 |
| 1.3.2 气孔形态特征对气孔导度的影响 | 第26页 |
| 1.3.3 气孔开度的调节机制 | 第26-28页 |
| 1.4 叶肉导度对光合速率的限制 | 第28-39页 |
| 1.4.1 CO_2在叶片内的传输 | 第29-31页 |
| 1.4.2 叶肉导度的检测方法及潜在的问题 | 第31-35页 |
| 1.4.3 叶片结构和生化因素对叶肉导度的限制 | 第35-38页 |
| 1.4.4 叶肉导度对环境变化的响应 | 第38-39页 |
| 1.5 叶片水力导度及其与光合速率的关系 | 第39-41页 |
| 1.5.1 水分在叶片内的流动路径 | 第39-41页 |
| 1.5.2 叶片水力导度与光合作用的关系 | 第41页 |
| 1.6 本研究的目的及内容 | 第41-43页 |
| 第二章 叶片形态结构、生化特性及功能性状的稻属间变异 | 第43-82页 |
| 2.1 材料与方法 | 第44-54页 |
| 2.1.1 植物材料及种植 | 第44页 |
| 2.1.2 气体交换及叶绿素荧光测定 | 第44-47页 |
| 2.1.3 叶片水力导度（Kleaf）的测定 | 第47-48页 |
| 2.1.4 叶脉内水力导度（Kx）及叶脉外水力导度（Kox）的测定 | 第48页 |
| 2.1.5 叶片形态性状及比叶重的测定 | 第48-49页 |
| 2.1.6 叶片结构性状的测定 | 第49-50页 |
| 2.1.7 叶片氮素含量、叶绿素以及Rubisco酶含量测定 | 第50页 |
| 2.1.8 气孔形态分析 | 第50-51页 |
| 2.1.9 水力导度的模拟 | 第51-52页 |
| 2.1.10 气孔导度的模拟 | 第52-53页 |
| 2.1.11 数学模型实现及统计分析 | 第53-54页 |
| 2.2 结果与分析 | 第54-67页 |
| 2.2.1 稻属叶片形态结构及生化特征的基因型差异 | 第54-58页 |
| 2.2.2 比叶重在基因型之间的变异及其与叶片密度的关系 | 第58-59页 |
| 2.2.3 稻属光合速率及水力导度的基因型差异 | 第59-60页 |
| 2.2.4 叶片生化特性对功能的影响 | 第60-63页 |
| 2.2.5 叶片形态特性对水力导度的影响 | 第63-66页 |
| 2.2.6 叶片形态特性对光合作用的影响 | 第66-67页 |
| 2.2.7 光合速率与叶片水力导度之间的关系 | 第67页 |
| 2.3 讨论 | 第67-82页 |
| 2.3.1 叶片氮素含量及Rubisco酶含量对光合速率的影响 | 第68-70页 |
| 2.3.2 二氧化碳传输对光合速率的影响 | 第70-71页 |
| 2.3.3 影响气孔导度的因素 | 第71-73页 |
| 2.3.4 影响叶肉导度的因素 | 第73-77页 |
| 2.3.5 气孔导度与叶肉导度的关联机制 | 第77-78页 |
| 2.3.6 叶片结构及生化特性对水力导度的限制 | 第78-80页 |
| 2.3.7 小结 | 第80-82页 |
| 第三章 叶片内形态结构与生化特性的变异及其对光合作用的影响 | 第82-95页 |
| 3.1 材料与方法 | 第83-85页 |
| 3.1.1 植物材料及培养 | 第83页 |
| 3.1.2 光合作用及叶绿素荧光参数测定 | 第83-84页 |
| 3.1.3 叶片氮素含量、叶绿素以及Rubisco酶含量测定 | 第84-85页 |
| 3.1.4 叶片结构分析 | 第85页 |
| 3.1.5 生物量及叶片形态 | 第85页 |
| 3.1.6 统计分析 | 第85页 |
| 3.2 结果与分析 | 第85-89页 |
| 3.2.1 生长表现及光合特征 | 第85-86页 |
| 3.2.2 叶片氮素含量、叶绿素含量及Rubisco酶含量 | 第86-87页 |
| 3.2.3 叶片结构 | 第87页 |
| 3.2.4 光合气体交换、叶片结构以及生化特性之间的相互关系 | 第87-89页 |
| 3.3 讨论 | 第89-95页 |
| 3.3.1 生化特性对光合作用的影响 | 第90-91页 |
| 3.3.2 叶片结构对光合作用的影响 | 第91-94页 |
| 3.3.3 对未来水稻育种的启示 | 第94-95页 |
| 第四章 氮素调节叶肉导度及其对CO2浓度、温度以及光强变化的响应 | 第95-115页 |
| 4.1 材料与方法 | 第96-101页 |
| 4.1.1 植物材料及培养 | 第96页 |
| 4.1.2 光合作用及叶绿素荧光参数测定 | 第96-98页 |
| 4.1.3 叶肉导度对相关计算参数的敏感度分析 | 第98-99页 |
| 4.1.4 叶片氮素含量、叶绿素以及Rubisco酶含量测定 | 第99-100页 |
| 4.1.5 叶片结构分析 | 第100页 |
| 4.1.6 生物量及叶片形态 | 第100页 |
| 4.1.7 统计分析 | 第100-101页 |
| 4.2 结果与分析 | 第101-111页 |
| 4.2.1 氮素供应对水稻生长及叶片生化特性的影响 | 第101页 |
| 4.2.2 氮素供应对光合气体交换参数的影响 | 第101-102页 |
| 4.2.3 氮素供应对叶片形态结构的影响 | 第102-104页 |
| 4.2.4 气体交换对环境变化的快速响应 | 第104-108页 |
| 4.2.5 敏感性分析 | 第108-111页 |
| 4.3 讨论 | 第111-115页 |
| 4.3.1 氮素供应对CO2传输的影响 | 第111-112页 |
| 4.3.2 叶肉导度对快速变化环境条件的响应 | 第112-114页 |
| 4.3.3 小结 | 第114-115页 |
| 第五章 叶片结构及环境因素对基于SPAD值的叶片氮素含量检测的影响 | 第115-127页 |
| 5.1 材料及方法 | 第116-118页 |
| 5.1.1 不同物种试验 | 第116页 |
| 5.1.2 短期光强变化对氮素检测影响试验 | 第116页 |
| 5.1.3 叶绿体运动对氮素检测影响试验 | 第116-117页 |
| 5.1.4 叶面积、叶绿素及叶氮含量测定 | 第117页 |
| 5.1.5 透射电镜分析 | 第117页 |
| 5.1.6 数据统计与分析 | 第117-118页 |
| 5.2 结果分析 | 第118-123页 |
| 5.2.1 SPAD值与叶绿素含量之间的关系 | 第118-119页 |
| 5.2.2 SPAD值日变化 | 第119-121页 |
| 5.2.3 SPAD值与叶片氮素含量之间的关系 | 第121-122页 |
| 5.2.4 叶绿素含量与叶片氮素之间的关系 | 第122-123页 |
| 5.2.5 氮素供应对叶片结构的影响 | 第123页 |
| 5.3 讨论 | 第123-127页 |
| 5.3.1 叶片结构及环境条件影响SPAD值的准确读取 | 第123-125页 |
| 5.3.2 叶片结构及环境条件影响氮素向叶绿素的分配 | 第125页 |
| 5.3.3 用SPAD值指导氮肥管理的潜在风险 | 第125-127页 |
| 第六章 结语 | 第127-130页 |
| 6.1 研究总结 | 第127-129页 |
| 6.1.1 叶片形态结构与功能之间的相互关系 | 第127-128页 |
| 6.1.2 光合速率在叶片内的变化 | 第128页 |
| 6.1.3 光合作用对环境变化的响应 | 第128-129页 |
| 6.2 本研究的创新点 | 第129-130页 |
| 参考文献 | 第130-147页 |
| 附件1 第一章Rubisco酶动力学参数数据来源文献 | 第147-149页 |
| 附件2 叶肉导度对长期及快速环境变化的响应总结(部分研究) | 第149-156页 |
| 附件3 第二章气孔及叶肉导度数据来源文献 | 第156-159页 |
| 攻读博士学位期间发表论文情况 | 第159-160页 |
| 致谢 | 第160-161页 |
