| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第1章 绪论 | 第12-23页 |
| 1.1 心血管材料表面改性 | 第12-14页 |
| 1.1.1 惰性修饰 | 第12-13页 |
| 1.1.2 活性修饰 | 第13页 |
| 1.1.3 多功能修饰 | 第13-14页 |
| 1.2 生物信号分子—NO | 第14-18页 |
| 1.2.1 NO的来源及作用 | 第14-15页 |
| 1.2.2 NO在生物材料表面改性方面的应用 | 第15-18页 |
| 1.3 分子手性 | 第18-20页 |
| 1.3.1 手性与生物活性分子 | 第18-19页 |
| 1.3.2 手性生物材料研究进展 | 第19-20页 |
| 1.4 论文研究目的与意义、内容及技术路线 | 第20-23页 |
| 1.4.1 论文研究目的与意义 | 第20-21页 |
| 1.4.2 论文研究内容 | 第21页 |
| 1.4.3 论文技术路线 | 第21-23页 |
| 第2章 胱氨酸在TI-O-聚多巴胺表面的固定及表征 | 第23-39页 |
| 2.1 引言 | 第23-24页 |
| 2.2 TI-O-聚多巴胺-胱氨酸的制备 | 第24-25页 |
| 2.2.1 Ti-O薄膜的制备 | 第24页 |
| 2.2.2 Ti-O膜表面沉积聚多巴胺 | 第24-25页 |
| 2.2.3 聚多巴胺表面固定不同手性胱氨酸 | 第25页 |
| 2.3 样品表面的材料学表征 | 第25-29页 |
| 2.3.1 X射线衍射能谱 | 第25页 |
| 2.3.2 X射线光电子谱 | 第25-26页 |
| 2.3.3 原子力显微镜 | 第26页 |
| 2.3.4 水接触角 | 第26-27页 |
| 2.3.5 QCM-D | 第27页 |
| 2.3.6 NO的体外催化释放 | 第27-29页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第29-38页 |
| 2.4.1 XRD | 第29页 |
| 2.4.2 XPS | 第29-32页 |
| 2.4.3 AFM | 第32-33页 |
| 2.4.4 水接触角 | 第33-34页 |
| 2.4.5 QCM-D | 第34-35页 |
| 2.4.6 NO体外催化释放 | 第35-38页 |
| 2.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第3章 TI-O-聚多巴胺-不同手性胱氨酸表面的内皮细胞相容性评价 | 第39-55页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 细胞相容性评价方法 | 第39-42页 |
| 3.2.1 ECs的提取 | 第39-40页 |
| 3.2.2 ECs的体外静态培养 | 第40页 |
| 3.2.3 ECs的体外迁移 | 第40-41页 |
| 3.2.4 样品催化释放NO对ECs分泌NO功能影响的评价 | 第41-42页 |
| 3.2.5 检测ECs培养基中硝酸盐和亚硝酸盐含量 | 第42页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第42-53页 |
| 3.3.1 表面性质(手性)对ECs粘附、增殖和迁移的影响 | 第42-48页 |
| 3.3.2 样品催化释放NO对ECs分泌NO功能的影响 | 第48-50页 |
| 3.3.3 表面性质(手性)和NO共同作用下ECs的粘附、增殖和迁移 | 第50-53页 |
| 3.4 本章小结 | 第53-55页 |
| 第4章 表面手性和NO释放对内皮细胞行为影响的机理讨论 | 第55-58页 |
| 4.1 表面手性对内皮细胞行为的影响 | 第55-56页 |
| 4.2 NO对内皮细胞行为的影响 | 第56-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 存在的问题及展望 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
