摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第10-34页 |
1.1 荧光探针简介 | 第10-15页 |
1.1.1 荧光探针设计原理 | 第10页 |
1.1.2 荧光探针的设计方法 | 第10-12页 |
1.1.3 荧光探针的识别机理 | 第12-15页 |
1.2 双光子荧光探针研究进展 | 第15-22页 |
1.2.1 双光子荧光机理 | 第16-17页 |
1.2.2 双光子荧光探针类型 | 第17-22页 |
1.3 Fe~(2+)的荧光探针研究进展 | 第22-27页 |
1.3.1 铁的体内稳态及游离铁库的检测 | 第22-23页 |
1.3.2 非选择性Fe~(2+)荧光探针 | 第23-25页 |
1.3.3 选择性Fe~(2+)荧光探针 | 第25-27页 |
1.4 Cys荧光探针研究进展 | 第27-32页 |
1.4.1 基于金属配位反应的Cys荧光探针 | 第28-29页 |
1.4.2 基于迈克尔加成反应的Cys荧光探针 | 第29页 |
1.4.3 基于磺酸酯/磺酰胺取代的Cys荧光探针 | 第29-30页 |
1.4.4 基于二硫键还原的Cys荧光探针 | 第30-31页 |
1.4.5 基于α,β-不饱和醛的Cys荧光探针 | 第31页 |
1.4.6 基于Se-N键还原的Cys荧光探针 | 第31-32页 |
1.5 课题的提出与主要研究内容 | 第32-34页 |
第2章 基于氮氧化物双光子Fe~(2+)探针的合成及生物应用 | 第34-56页 |
2.1 前言 | 第34-35页 |
2.2 实验部分 | 第35-41页 |
2.2.1 仪器与试剂 | 第35-36页 |
2.2.2 Coum-Nox的合成 | 第36页 |
2.2.3 Acedan-Nox的合成 | 第36-38页 |
2.2.4 探针Coum-Nox和Acedan-Nox的光谱性质研究 | 第38-41页 |
2.3 结果与讨论 | 第41-55页 |
2.3.1 探针Coum-Nox和Acedan-Nox的设计 | 第41页 |
2.3.2 探针Coum-Nox和Acedan-Nox对Fe~(2+)的光谱响应 | 第41-43页 |
2.3.3 探针Coum-Nox和Acedan-Nox对不同浓度Fe~(2+)的响应 | 第43-45页 |
2.3.4 探针Coum-Nox和Acedan-Nox对Fe~(2+)的响应动力学 | 第45-46页 |
2.3.5 探针Coum-Nox和Acedan-Nox对Fe~(2+)的响应专一性 | 第46-48页 |
2.3.6 pH对探针Coum-Nox和Acedan-Nox稳定性的影响 | 第48-49页 |
2.3.7 探针Coum-Nox对Fe~(2+)响应机理验证 | 第49-51页 |
2.3.8 探针Coum-Nox和Acedan-Nox检测活细胞中的Fe~(2+) | 第51-53页 |
2.3.9 探针Coum-Nox探究HepG2细胞和L02细胞表面TfR表达差异 | 第53-55页 |
2.4 小结 | 第55-56页 |
第3章 基于ESIPT和AIE双重效应的Cys荧光探针的合成及性质研究 | 第56-70页 |
3.1 前言 | 第56-57页 |
3.2 实验部分 | 第57-61页 |
3.2.1 仪器与试剂 | 第57页 |
3.2.2 探针HCA-A的合成 | 第57-58页 |
3.2.3 探针HCA-A的光谱性质测试 | 第58-61页 |
3.3 结果与讨论 | 第61-69页 |
3.3.1 探针HCA-A的设计 | 第61页 |
3.3.2 荧光团HCA与探针HCA-A的光学性质 | 第61-63页 |
3.3.3 探针HCA-A对Cys响应的特征荧光光谱 | 第63-64页 |
3.3.4 探针HCA-A对Cys的响应动力学 | 第64页 |
3.3.5 探针HCA-A对不同浓度Cys的响应 | 第64-65页 |
3.3.6 探针HCA-A对Cys响应的专一性 | 第65-66页 |
3.3.7 pH对探针HCA-A稳定性的影响 | 第66-67页 |
3.3.8 探针HCA-A对Cys响应机理的验证 | 第67-68页 |
3.3.9 探针HCA-A检测活细胞中的Cys | 第68-69页 |
3.4 小结 | 第69-70页 |
总结 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-83页 |
附录A 攻读学位期间所发表的论文目录 | 第83-84页 |
附录B 部分化合物谱图 | 第84-91页 |
致谢 | 第91页 |