| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| 1.1 贝类概述 | 第10页 |
| 1.2 贝类酸性多糖 | 第10-13页 |
| 1.2.1 糖胺聚糖 | 第10-12页 |
| 1.2.1.1 透明质酸 | 第11页 |
| 1.2.1.2 硫酸角质素 | 第11页 |
| 1.2.1.3 肝素、硫酸乙酰肝素 | 第11页 |
| 1.2.1.4 硫酸软骨素、硫酸皮肤素 | 第11-12页 |
| 1.2.1.5 其他糖胺聚糖 | 第12页 |
| 1.2.2 非糖胺聚糖 | 第12-13页 |
| 1.3 酸性多糖的降解方法 | 第13-15页 |
| 1.3.1 物理降解法 | 第13页 |
| 1.3.1.1 微波辐射降解 | 第13页 |
| 1.3.1.2 超声波法 | 第13页 |
| 1.3.1.3 高压均质降解法 | 第13页 |
| 1.3.2 生物降解法 | 第13-14页 |
| 1.3.3 化学降解法 | 第14-15页 |
| 1.3.3.1 过氧化氢降解 | 第14页 |
| 1.3.3.2 亚硝酸钠降解 | 第14页 |
| 1.3.3.3 电化学降解 | 第14-15页 |
| 1.3.3.4 酸降解 | 第15页 |
| 1.4 酸性多糖残基的分析方法 | 第15-17页 |
| 1.4.1 薄层色谱法 | 第15页 |
| 1.4.2 气相色谱法 | 第15-16页 |
| 1.4.3 高效液相色谱法 | 第16页 |
| 1.4.4 离子色谱法 | 第16页 |
| 1.4.5 LC/MS联用技术 | 第16-17页 |
| 1.5 糖数据库 | 第17-18页 |
| 1.6 研究内容及选题意义 | 第18-19页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第18页 |
| 1.6.2 选题意义 | 第18-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-27页 |
| 2.1 材料 | 第19-22页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第19-20页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 原料预处理 | 第22页 |
| 2.2.2 酶解时间的确立 | 第22页 |
| 2.2.3 醇沉条件的确定 | 第22-23页 |
| 2.2.4 原料中粗多糖的提取 | 第23页 |
| 2.2.5 样品硫酸多糖含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.5.1 1,9-二甲基亚甲蓝(DMB)染色液的配置 | 第23页 |
| 2.2.5.2 制作标准曲线 | 第23页 |
| 2.2.5.3 样品硫酸多糖含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.6 定性分析8种贝类中的酸性多糖 | 第23-25页 |
| 2.2.6.1 酸水解 | 第23-24页 |
| 2.2.6.2 1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(PMP)柱前衍生化 | 第24页 |
| 2.2.6.3 HPLC-MS分析 | 第24-25页 |
| 2.2.7 定量分析21种贝类中的酸性多糖 | 第25-26页 |
| 2.2.7.1 酸水解 | 第25页 |
| 2.2.7.2 PMP柱前衍生化 | 第25页 |
| 2.2.7.3 HPLC-MS/MS分析 | 第25-26页 |
| 2.3 初步构建贝类酸性多糖数据库 | 第26-27页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第27-53页 |
| 3.1 贝类多糖提取条件的优化 | 第27-29页 |
| 3.1.1 最佳酶解时间 | 第27-28页 |
| 3.1.2 最佳醇沉条件 | 第28-29页 |
| 3.2 贝类中硫酸多糖含量的测定 | 第29-32页 |
| 3.3 定性分析8种贝类酸性多糖 | 第32-38页 |
| 3.3.1 HPLC-MS/MS分析 | 第32-34页 |
| 3.3.2 HPLC-MS~n分析 | 第34-38页 |
| 3.4 定量分析21种贝类酸性多糖 | 第38-51页 |
| 3.4.1 定量分析不同种属全贝酸性多糖 | 第38-45页 |
| 3.4.2 定量分析不同产地的短文蛤、泥蚶的酸性多糖 | 第45-46页 |
| 3.4.3 定量分析不同采样时间对青蛤酸性多糖的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.4 定量分析砂海螂、西施舌不同组织部位的酸性多糖 | 第47-51页 |
| 3.5 贝类酸性多糖数据库的初步构建 | 第51-53页 |
| 第四章 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 研究成果 | 第61-62页 |
