| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-17页 |
| 1.1 脑卒中概述 | 第12页 |
| 1.2 脑卒中病理生理学 | 第12-14页 |
| 1.2.1 兴奋毒性及线粒体障碍 | 第12-13页 |
| 1.2.2 自由基及氧化应激 | 第13页 |
| 1.2.3 炎症反应和血脑屏障的作用 | 第13-14页 |
| 1.3 小胶质细胞 | 第14页 |
| 1.3.1 小胶质细胞概述 | 第14页 |
| 1.3.2 小胶质细胞分型及功能 | 第14页 |
| 1.4 神经干细胞治疗脑卒中 | 第14-15页 |
| 1.5 神经炎症与神经干细胞 | 第15-16页 |
| 1.5.1 神经干细胞壁龛 | 第15页 |
| 1.5.2 神经炎症对神经干细胞的影响 | 第15-16页 |
| 1.6 本课题研究目的及意义 | 第16-17页 |
| 第二章 新生小鼠神经干细体外分离培养及诱导分化鉴定 | 第17-26页 |
| 2.1 引言 | 第17页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第17-20页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.3 图形采集及数据处理 | 第20页 |
| 2.4 结果 | 第20-24页 |
| 2.4.1 NSCs体外分离培养鉴定 | 第20-21页 |
| 2.4.2 NSCs体外诱导分化后免疫荧光鉴定 | 第21-22页 |
| 2.4.3 BrdU、EdU掺入神经干细胞后标记效果比较 | 第22-24页 |
| 2.5 讨论 | 第24-26页 |
| 第三章 新生小鼠海马神经干细胞的冻存与复苏 | 第26-34页 |
| 3.1 引言 | 第26页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第26-27页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第26页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 3.3 图像采集及数据处理 | 第27页 |
| 3.4 结果 | 第27-32页 |
| 3.4.1 台盼蓝染色检测复苏后神经干细胞活力 | 第27-29页 |
| 3.4.2 CCK-8 检测复苏后神经干细胞增值能力 | 第29-30页 |
| 3.4.3 复苏后的神经干细胞免疫荧光 | 第30-32页 |
| 3.5 讨论 | 第32-34页 |
| 第四章 神经干细胞移植治疗缺血性脑卒中的研究 | 第34-45页 |
| 4.1 引言 | 第34页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第34-37页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第34-35页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第35-37页 |
| 4.3 图像采集及数据处理 | 第37页 |
| 4.4 结果 | 第37-42页 |
| 4.4.1 模型建立示意图 | 第37页 |
| 4.4.2 尼氏、TTC染色鉴定模型 | 第37-38页 |
| 4.4.3 外源性NSCs脑内移植后的存活及分化 | 第38-41页 |
| 4.4.4 FJ-C染色后退行性神经元计数比较 | 第41页 |
| 4.4.5 加速转棒测试 | 第41-42页 |
| 4.4.6 前肢抓力测试 | 第42页 |
| 4.5 讨论 | 第42-45页 |
| 第五章 去小胶质协同神经干细胞移植治疗缺血性脑卒中 | 第45-55页 |
| 5.1 引言 | 第45页 |
| 5.2 实验材料与方法 | 第45-46页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第45页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第45-46页 |
| 5.3 数据分析及图像采集 | 第46页 |
| 5.4 结果 | 第46-52页 |
| 5.4.1 建模后及PLX3397处理后脑内小胶质细胞变化 | 第46-47页 |
| 5.4.2 A、B两组脑内外源性神经干细胞的存活及分化 | 第47-50页 |
| 5.4.3 加速转棒测试 | 第50页 |
| 5.4.5 前肢抓力测试 | 第50-51页 |
| 5.4.6 自发活动测试 | 第51-52页 |
| 5.5 讨论 | 第52-53页 |
| 5.6 总结 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-67页 |
| 在学期间的研究成果 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
