| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第8-21页 |
| 1.1 干细胞 | 第8-15页 |
| 1.1.1 干细胞生物学特性 | 第9页 |
| 1.1.2 干细胞分类及临床意义 | 第9-15页 |
| 1.2 外泌体 | 第15-20页 |
| 1.2.1 外泌体的发现 | 第16页 |
| 1.2.2 外泌体的分子构成 | 第16-17页 |
| 1.2.3 外泌体的生物发生 | 第17-18页 |
| 1.2.4 外泌体的生化潜能 | 第18-20页 |
| 1.3 论文的目的与意义 | 第20-21页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第21-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第21页 |
| 2.1.3 药品及其它 | 第21-22页 |
| 2.2 主要试剂的配制 | 第22-23页 |
| 2.3 基本实验方法 | 第23-29页 |
| 2.3.1 大鼠骨髓间充质干细胞 SD-BMSC 原代培养 | 第23-24页 |
| 2.3.2 SD-BMSC 传代培养 | 第24页 |
| 2.3.3 SD-BMSC 的冻存 | 第24-25页 |
| 2.3.4 SD-BMSC 的复苏及检测 | 第25页 |
| 2.3.5 超速离心法提取 Exosome | 第25-26页 |
| 2.3.6 SD-BMSC 和 SD-BMS-Exosome 蛋白的提取 | 第26页 |
| 2.3.7 BCA 法测定蛋白质浓度 | 第26页 |
| 2.3.8 Western Blot 免疫印迹法检测目的蛋白 | 第26-28页 |
| 2.3.9 免疫荧光染色实验 | 第28-29页 |
| 第三章 实验结果 | 第29-37页 |
| 3.1 原代SD-BMSC的形态观察 | 第29页 |
| 3.2 SD-BMSC 来源的 Exosome 的间充质干细胞特征鉴定 | 第29-30页 |
| 3.3 MTT检测SD-BMSC-Exosome对氧化损伤的HT22细胞增殖抑制率的影响 | 第30-32页 |
| 3.4 免疫荧光染色法观察过氧化氢损伤对 HT22 细胞骨架的影响 | 第32-33页 |
| 3.5 SD-BMSC分泌的Exosome对过氧化氢损伤HT22细胞中SOD活性检测 | 第33-34页 |
| 3.6 SD-BMSC分泌的Exosome对过氧化氢损伤HT22细胞中LDH的影响 | 第34-35页 |
| 3.7 PKH26追踪Exosome在通过HT22细胞内吞后在细胞中的定位 | 第35-37页 |
| 第四章 讨论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-44页 |
| 缩略词表 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45页 |
