| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-36页 |
| 1.1 荧光及描述荧光性质的参数 | 第12-14页 |
| 1.1.1 荧光发生的基本原理 | 第12页 |
| 1.1.2 描述荧光性质的参数 | 第12-14页 |
| 1.1.2.1 荧光的激发光谱和发射光谱 | 第12-13页 |
| 1.1.2.2 影响荧光强度的因素 | 第13-14页 |
| 1.1.3 荧光分析法的特点 | 第14页 |
| 1.1.4 荧光分析法的应用 | 第14页 |
| 1.2 生物传感器概述 | 第14-24页 |
| 1.2.1 生物传感器 | 第14-15页 |
| 1.2.2 生物传感器的分类 | 第15页 |
| 1.2.3 DNA生物传感器 | 第15-16页 |
| 1.2.4 DNA生物传感器的应用 | 第16-21页 |
| 1.2.4.1 检测DNA | 第16-17页 |
| 1.2.4.2 检测蛋白质 | 第17-18页 |
| 1.2.4.3 检测无机金属离子 | 第18-19页 |
| 1.2.4.4 检测Micro RNA | 第19-20页 |
| 1.2.4.5 抗生素分析 | 第20页 |
| 1.2.4.6 其它方面 | 第20-21页 |
| 1.2.5 荧光生物传感器 | 第21页 |
| 1.2.6 荧光生物传感器的应用 | 第21-24页 |
| 1.2.6.1 检测T4多核苷酸激酶 | 第21-22页 |
| 1.2.6.2 检测细胞中的端粒酶 | 第22-23页 |
| 1.2.6.3 检测Micro RNA | 第23-24页 |
| 1.3 纳米材料及其应用 | 第24-29页 |
| 1.3.1 金属纳米簇 | 第25页 |
| 1.3.2 量子点 | 第25-27页 |
| 1.3.3 胶体金 | 第27-29页 |
| 1.4 荧光铜纳米粒子的研究现状及其应用 | 第29-34页 |
| 1.4.1 荧光铜纳米粒子的研究现状 | 第29-31页 |
| 1.4.1.1 单链DNA的筛选 | 第29-30页 |
| 1.4.1.2 单链DNA长度的影响 | 第30-31页 |
| 1.4.2 荧光铜纳米粒子的应用 | 第31-34页 |
| 1.4.2.1 检测S1 nuclease | 第31-32页 |
| 1.4.2.2 检测碱性磷酸酶（ALP） | 第32-33页 |
| 1.4.2.3 检测生物巯基化合物 | 第33页 |
| 1.4.2.4 其他方面 | 第33-34页 |
| 1.5 本论文的研究意义与主要内容 | 第34-36页 |
| 第二章 基于荧光铜纳米粒子检测乙酰胆碱酯酶的活性及其抑制剂的筛选 | 第36-54页 |
| 2.1 引言 | 第36-37页 |
| 2.2 实验部分 | 第37-38页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第37页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第37-38页 |
| 2.2.2.1 荧光铜纳米粒子的形成 | 第37-38页 |
| 2.2.2.2 乙酰胆碱酯酶活性检测 | 第38页 |
| 2.2.2.3 乙酰胆碱酯酶的抑制剂检测 | 第38页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第38-53页 |
| 2.3.1 实验原理 | 第38-39页 |
| 2.3.2 荧光铜纳米粒子的表征 | 第39-40页 |
| 2.3.3 荧光铜纳米粒子的激发与发射 | 第40-41页 |
| 2.3.4 荧光铜纳米粒子的紫外吸收 | 第41页 |
| 2.3.5 荧光铜纳米粒子合成实验条件优化 | 第41-44页 |
| 2.3.5.1 不同浓度poly T的优化 | 第41-42页 |
| 2.3.5.2 不同浓度抗坏血酸钠的优化 | 第42-43页 |
| 2.3.5.3 p H的优化 | 第43-44页 |
| 2.3.6 荧光铜纳米粒子合成时间与荧光强度的关系 | 第44-45页 |
| 2.3.7 验证检测乙酰胆碱酯酶的实验可行性 | 第45-46页 |
| 2.3.8 实验条件优化 | 第46-47页 |
| 2.3.8.1 硫代乙酰胆碱的浓度优化 | 第46页 |
| 2.3.8.2 ACh E水解时间的优化 | 第46-47页 |
| 2.3.9 体系p H的优化 | 第47-48页 |
| 2.3.10 ACh E浓度的检测 | 第48-49页 |
| 2.3.11 实验方案的选择性 | 第49-50页 |
| 2.3.12 他克林或加兰他敏的抑制实验 | 第50-52页 |
| 2.3.13 他克林或加兰他敏对实验体系的抑制效率 | 第52-53页 |
| 2.4 本章小结 | 第53-54页 |
| 第三章 基于Exo III循环反应与荧光铜纳米粒子荧光检测DNA | 第54-68页 |
| 3.1 引言 | 第54页 |
| 3.2 实验部分 | 第54-57页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第54-55页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第55-57页 |
| 3.2.2.1 Cu S纳米粒子的合成 | 第55页 |
| 3.2.2.2 DNA与Cu S纳米粒子的连接 | 第55-56页 |
| 3.2.2.3 DNA与磁珠的连接 | 第56页 |
| 3.2.2.4 双链DNA的形成 | 第56页 |
| 3.2.2.5 Exo III循环放大反应 | 第56-57页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第57-66页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第57-59页 |
| 3.3.2 Cu S纳米粒子的电镜表征 | 第59页 |
| 3.3.3 荧光铜纳米粒子的表征 | 第59页 |
| 3.3.4 荧光铜纳米粒子的激发与发射 | 第59页 |
| 3.3.5 荧光铜纳米粒子的紫外吸收 | 第59页 |
| 3.3.6 银离子干扰的排除 | 第59-60页 |
| 3.3.7 实验可行性 | 第60-61页 |
| 3.3.8 ICP-MS验证实验可行性 | 第61-62页 |
| 3.3.9 实验条件的优化 | 第62-63页 |
| 3.3.10 检测目标DNA的灵敏度 | 第63-64页 |
| 3.3.11 实验方案的选择性 | 第64-65页 |
| 3.3.12 实际样品的检测 | 第65-66页 |
| 3.4 本章小结 | 第66-68页 |
| 第四章 基于Exo III串联循环放大反应与荧光铜纳米粒子荧光检测DNA | 第68-80页 |
| 4.1 引言 | 第68页 |
| 4.2 实验部分 | 第68-70页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第68-69页 |
| 4.2.2 实验步骤 | 第69-70页 |
| 4.2.2.1 Cu S纳米粒子的合成 | 第69页 |
| 4.2.2.2 DNA与Cu S纳米粒子的连接 | 第69页 |
| 4.2.2.3 DNA与磁珠的连接 | 第69页 |
| 4.2.2.4 双链DNA的形成 | 第69-70页 |
| 4.2.2.5 Exo III串联循环放大反应 | 第70页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第70-79页 |
| 4.3.1 实验原理 | 第70-73页 |
| 4.3.2 Cu S纳米粒子的电镜表征 | 第73页 |
| 4.3.3 荧光铜纳米粒子的表征 | 第73页 |
| 4.3.4 荧光铜纳米粒子的激发与发射 | 第73页 |
| 4.3.5 荧光铜纳米粒子的紫外吸收 | 第73页 |
| 4.3.6 银离子干扰的排除 | 第73页 |
| 4.3.7 实验可行性 | 第73-74页 |
| 4.3.8 ICP-MS验证实验可行性 | 第74-75页 |
| 4.3.9 实验条件的优化 | 第75-77页 |
| 4.3.10 检测目标DNA的灵敏度 | 第77-78页 |
| 4.3.11 实验方案的选择性 | 第78页 |
| 4.3.12 实际样品的检测 | 第78-79页 |
| 4.4 本章小结 | 第79-80页 |
| 结论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-88页 |
| 致谢 | 第88-90页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文目录 | 第90-91页 |
