| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 缩略语表（Abbreviation） | 第8-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-20页 |
| 1.1 乙型脑炎简介 | 第9页 |
| 1.2 乙型脑炎的流行病学 | 第9-11页 |
| 1.2.1 乙型脑炎的流行分布 | 第9-10页 |
| 1.2.2 乙型脑炎的传播途径 | 第10-11页 |
| 1.2.3 乙型脑炎的易感群体 | 第11页 |
| 1.3 乙型脑炎病毒 | 第11-15页 |
| 1.3.1 乙型脑炎病毒基因组结构与功能 | 第11-12页 |
| 1.3.2 乙型脑炎病毒复制 | 第12-13页 |
| 1.3.3 乙型脑炎病毒致病过程 | 第13-14页 |
| 1.3.4 乙型脑炎病毒理化性质 | 第14-15页 |
| 1.4 乙型脑炎的临床症状 | 第15页 |
| 1.5 乙型脑炎的诊断和防控 | 第15-17页 |
| 1.5.1 乙型脑炎的诊断 | 第15-16页 |
| 1.5.2 乙型脑炎的防控 | 第16-17页 |
| 1.6 免疫逃逸 | 第17-20页 |
| 1.6.1 骨髓来源抑制性细胞群体 | 第17-18页 |
| 1.6.2 ADAM17分子与CD62L分子 | 第18-19页 |
| 1.6.3 Arg-1 信号通路 | 第19-20页 |
| 2 研究目的及意义 | 第20-21页 |
| 3 方法与材料 | 第21-29页 |
| 3.1 材料 | 第21-22页 |
| 3.1.1 实验所用小鼠、病毒 | 第21页 |
| 3.1.2 实验用相关试剂 | 第21-22页 |
| 3.2 方法 | 第22-28页 |
| 3.2.1 实验相关主要仪器设备 | 第22-23页 |
| 3.2.2 病毒扩增及滴定 | 第23-24页 |
| 3.2.3 动物实验 | 第24-28页 |
| 3.3 数据分析 | 第28页 |
| 3.4 手术器械消毒和实验动物及废物无害化处理 | 第28-29页 |
| 4 结果与分析 | 第29-41页 |
| 4.1 空斑实验测定JEV-P3株毒价 | 第29页 |
| 4.2 JVE感染小鼠后脾脏中MDSCs检测 | 第29-30页 |
| 4.3 MDSCs对T细胞的影响 | 第30-34页 |
| 4.3.1 JEV感染对Th1细胞的影响 | 第30-31页 |
| 4.3.2 JEV感染对Th2细胞的影响 | 第31-32页 |
| 4.3.3 JEV感染对Tfh细胞的影响 | 第32-33页 |
| 4.3.4 JEV感染小鼠来源MDSCs与健康小鼠来源T细胞共培养细胞增殖情况 | 第33-34页 |
| 4.4 JEV刺激体外培养的骨髓后，检测细胞上清中Arg-1 的变化 | 第34-35页 |
| 4.5 流式检测脾脏细胞中ROS的变化 | 第35-36页 |
| 4.6 JEV感染后脾脏中ADAM17的检测 | 第36页 |
| 4.7 Transwell检测MDSCs的主要作用途径 | 第36-37页 |
| 4.8 T细胞膜表面分子CD62L的检测 | 第37-38页 |
| 4.9 抑制共培养体系中ADAM17后，检测T细胞的增殖情况 | 第38-39页 |
| 4.10 脾脏中趋化因子的检测 | 第39-40页 |
| 4.11 脾脏中S100A8/A9的检测 | 第40-41页 |
| 5 讨论 | 第41-45页 |
| 5.1 JEV感染后脾脏中MDSCs数量增加 | 第41页 |
| 5.2 JEV感染后脾脏中Tfh细胞显著下降 | 第41-42页 |
| 5.3 JEV感染后脾脏中T细胞数量下降 | 第42页 |
| 5.4 JEV感染后外周免疫器官中ROS表达量增加 | 第42-43页 |
| 5.5 JEV感染后外周免疫器官中趋化因子的变化 | 第43-44页 |
| 5.6 总结 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
