第一篇 文献综述 | 第9-27页 |
第一章 MMPs家族的概述 | 第9-20页 |
第一节 细胞外基质的组成及功能 | 第9-11页 |
第二节 MMPs家族的发现历史 | 第11页 |
第三节 MMPs家族的分类、分布及作用底物 | 第11-16页 |
第四节 MMPs结构 | 第16-17页 |
第五节 MMPs的性质 | 第17页 |
第六节 MMPs的调控机制 | 第17-20页 |
一、 转录水平的调节 | 第17-18页 |
二、 酶原激活的调节 | 第18-19页 |
三、 活化酶抑制的调节 | 第19-20页 |
第二章 MMPs抑制剂的概述 | 第20-23页 |
第一节 生物抑制剂TIMPs | 第20-22页 |
一、 TIMPs家族成员 | 第20-21页 |
二、 TIMPs结构与调节 | 第21页 |
三、 TIMPs功能 | 第21-22页 |
第二节 人工合成MMPs抑制剂 | 第22-23页 |
一、 与MMP催化中心Zn2+ 螯合而抑制其水解酶活性 | 第22-23页 |
二、 阻断MMPs酶原活化 | 第23页 |
三、 在基因水平阻断MMPs合成 | 第23页 |
第三章 MMPs及其抑制剂在肿瘤侵袭、转移中的作用 | 第23-27页 |
第一节 降解细胞外基质 | 第23-24页 |
第二节 在新生血管形成中的作用 | 第24-25页 |
第三节 调节细胞粘附 | 第25-27页 |
第二篇 前言 | 第27-29页 |
第三篇 实验研究 | 第29-69页 |
第一章 MMP-2 C端片段PEX 基因真核表达载体的构建 | 第29-40页 |
第一节 鼠Sig-PEX cDNA 片断的获得 | 第29-33页 |
一、 材料 | 第29页 |
二、 方法 | 第29-32页 |
三、 结果 | 第32-33页 |
第二节 Sig-PEX基因片断的TA克隆 | 第33-37页 |
一、 材料 | 第33-34页 |
二、 方法 | 第34-36页 |
三、 结果 | 第36-37页 |
第三节 pcDNA3.1- Sig-PEX表达载体的构建 | 第37-40页 |
一、 材料 | 第37页 |
二、 方法 | 第37-38页 |
三、 结果 | 第38-40页 |
第二章 重组质粒pcDNA3.1- Sig-PEX转染鼠黑色素瘤细胞 | 第40-43页 |
第一节 材料 | 第40-41页 |
第二节 方法 | 第41-42页 |
第三节 结果 | 第42-43页 |
第三章 Sig-PEX基因在B16F10细胞中的表达 | 第43-47页 |
第一节 材料 | 第43页 |
第二节 方法 | 第43-45页 |
第三节 结果 | 第45-47页 |
第四章 PEX基因对黑色素瘤细胞生物学性状影响的体外研究 | 第47-52页 |
第一节 材料 | 第47-48页 |
第二节 方法 | 第48-50页 |
第三节 结果 | 第50-52页 |
第五章 PEX基因对黑色素瘤细胞体内生物学行为的影响 | 第52-54页 |
第一节 材料 | 第52页 |
第二节 方法 | 第52-53页 |
第三节 观察内容及指标 | 第53页 |
第四节 结果 | 第53-54页 |
第六章 PEX基因对微血管生成的影响 | 第54-58页 |
第一节 材料 | 第54页 |
第二节 方法 | 第54-56页 |
第三节 结果 | 第56-58页 |
第七章 PEX基因对MMP-2活化的影响 | 第58-60页 |
第一节 方法 | 第58-59页 |
第二节 结果 | 第59-60页 |
第八章 讨论 | 第60-69页 |
一、 目的基因Sig-PEX的克隆、真核表达质粒的构建及转染细胞株的稳定筛选 | 第60-62页 |
二、 PEX基因在体外对B16F10细胞生物学性状的影响 | 第62-64页 |
三、 PEX基因对B16F10细胞体内生物学行为的影响 | 第64-65页 |
四、 PEX基因对微血管生成的影响 | 第65-67页 |
五、 PEX基因对B16F10细胞酶原活化的影响 | 第67-69页 |
第四篇 结论 | 第69-70页 |
第五篇 参考文献 | 第70-81页 |
第六篇 附图及照片 | 第81-92页 |
攻博期间发表的学术论文及其它成果 | 第92-93页 |
致 谢 | 第93-94页 |
中文摘要 | 第94-99页 |
英文摘要 | 第99页 |
吉林大学博士学位论文原创性声明 | 第104页 |