| 缩写词 | 第9-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13页 |
| 0 前言 | 第16-18页 |
| 1 文献综述 | 第18-36页 |
| 1.1 植物雄性不育的概述 | 第18-22页 |
| 1.1.1 植物雄性不育的表型特征 | 第18-19页 |
| 1.1.2 植物雄性不育的类型 | 第19页 |
| 1.1.3 植物胞质雄性不育产生的途径 | 第19-21页 |
| 1.1.4 植物胞质雄性不育的经典遗传学研究 | 第21页 |
| 1.1.5 植物胞质雄性不育在杂种优势中的利用 | 第21-22页 |
| 1.2 胞质雄性不育发生的细胞学研究 | 第22-23页 |
| 1.2.1 胞质雄性不育小孢子的败育时期和特点 | 第22页 |
| 1.2.2 绒毡层的异常与小孢子败育的关系 | 第22-23页 |
| 1.3 胞质雄性不育的生理生化研究 | 第23-24页 |
| 1.3.1 蛋白质分析 | 第23-24页 |
| 1.3.2 同工酶分析 | 第24页 |
| 1.4 胞质雄性不育的分子研究 | 第24-31页 |
| 1.4.1 植物线粒体与胞质雄性不育性 | 第25-26页 |
| 1.4.1.1 线粒体DNA多态性与CMS | 第25页 |
| 1.4.1.2 线粒体基因的转录产物与CMS | 第25-26页 |
| 1.4.1.3 线粒体多肽差异与CMS | 第26页 |
| 1.4.2 线粒体中与胞质雄性不育性相关基因研究 | 第26-29页 |
| 1.4.3 胞质雄性不育形成的分子机制探讨 | 第29-31页 |
| 1.4.3.1 线粒体DNA重排引起CMS | 第29-30页 |
| 1.4.3.2 转录和翻译调控导致CMS | 第30页 |
| 1.4.3.3 特异多肽引起CMS | 第30-31页 |
| 1.4.4 核基因组对胞质雄性不育的影响 | 第31页 |
| 1.5 cDNA-AFLP技术及其应用 | 第31-36页 |
| 1.5.1 cDNA-AFLP技术的原理与方法 | 第31-32页 |
| 1.5.2 cDNA-AFLP技术的特点 | 第32-33页 |
| 1.5.3 cDNA-AFLP技术的应用 | 第33-36页 |
| 1.5.3.1 基因表达特性的研究 | 第33页 |
| 1.5.3.2 遗传标记分析 | 第33-34页 |
| 1.5.3.3 分离特异表达的基因 | 第34-36页 |
| 2 白菜与芜菁Ogura雄性不育系和保持系获得及不同回交世代植物学性状比较分析 | 第36-48页 |
| 2.1 材料与方法 | 第36-37页 |
| 2.1.1 材料的转育与获得 | 第36-37页 |
| 2.1.2 不育系和保持系植株性状观察和育性鉴定 | 第37页 |
| 2.1.3 花器形态比较观察 | 第37页 |
| 2.1.4 白菜Ogura雄性不育系杂交组合的配制 | 第37页 |
| 2.2 结果与分析 | 第37-41页 |
| 2.2.1 F_1、BC_1、BC_2和BC_3的植物学性状研究 | 第37-39页 |
| 2.2.2 白菜与芜菁Ogura雄性不育系的植物学特征 | 第39-40页 |
| 2.2.3 白菜与芜菁Ogura雄性不育系和保持系花粉生活力检测 | 第40-41页 |
| 2.2.4 白菜Ogura雄性不育系杂交组合的配制 | 第41页 |
| 2.3 讨论 | 第41-48页 |
| 3 甘监型油菜Ogura雄性不育系×白菜、芜菁杂种F1及其回交后代染色体减数分裂行为分析 | 第48-56页 |
| 3.1 材料与方法 | 第48-49页 |
| 3.2 结果与分析 | 第49-53页 |
| 3.2.1 F_1减数分裂染色体数目变化 | 第49页 |
| 3.2.2 BC_1代减数分裂染色体数目变化 | 第49-50页 |
| 3.2.3 BC_2代减数分裂染色体数目变化 | 第50-51页 |
| 3.2.4 BC_3根尖体细胞数的变化规律 | 第51-52页 |
| 3.2.5 BC_1代减数分裂后期染色体分离规律 | 第52-53页 |
| 3.3 讨论 | 第53-56页 |
| 4 白菜与芜菁Ogura雄性不育系和保持系的小孢子发生的细胞学观察 | 第56-62页 |
| 4.1 材料与方法 | 第56页 |
| 4.2 结果与分析 | 第56-58页 |
| 4.2.1 保持系花药和小孢子发育的细胞形态学观察 | 第56-57页 |
| 4.2.2 不育系花药和小孢子发生的细胞形态学观察 | 第57-58页 |
| 4.2.2.1 小孢子败育 | 第57页 |
| 4.2.2.2 绒毡层异常 | 第57-58页 |
| 4.3 讨论 | 第58-62页 |
| 4.3.1 Ogura雄性不育系小孢子的败育时期和特点 | 第58页 |
| 4.3.2 绒毡层的异常与小孢子败育的关系 | 第58-62页 |
| 5 甘蓝型油菜Ogura雄性不育系×白菜、芜菁的回交杂种后代与亲本的同工酶分析 | 第62-72页 |
| 5.1 材料与方法 | 第62-63页 |
| 5.1.1 植物材料 | 第62页 |
| 5.1.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 | 第62-63页 |
| 5.1.3 SDS-PAGE分析 | 第63页 |
| 5.2 结果与分析 | 第63-69页 |
| 5.2.1 F_1、BC_2代与回交亲本的蛋白质分析 | 第63-65页 |
| 5.2.2 F_1、BC_2代与回交亲本的过氧化物同工酶分析 | 第65页 |
| 5.2.3 F_1、BC_2代与回交亲本的酯酶同工酶分析 | 第65-69页 |
| 5.2.4 F_1、BC_2代与回交亲本的α-淀粉酶同工酶分析 | 第69页 |
| 5.3 讨论 | 第69-72页 |
| 6 白菜与芜菁Ogura雄性不育相关基因orf138的克隆及其序列分析 | 第72-78页 |
| 6.1 材料与方法 | 第72-74页 |
| 6.1.1 植物材料 | 第72页 |
| 6.1.2 菌种和质粒 | 第72页 |
| 6.1.3 试剂和仪器 | 第72-73页 |
| 6.1.4 不同回交世代的白菜与芜菁Ogura雄性不育材料DNA提取 | 第73-74页 |
| 6.1.4.1 DNA提取 | 第73页 |
| 6.1.4.2 紫外分光比色检测 | 第73页 |
| 6.1.4.3 琼脂糖凝胶电泳检测 | 第73-74页 |
| 6.1.5 orf138基因的扩增 | 第74页 |
| 6.1.6 DNA的重组与转化 | 第74页 |
| 6.1.7 重组质粒的提取和酶切 | 第74页 |
| 6.1.8 核苷酸序列测定及分析 | 第74页 |
| 6.2 结果与分析 | 第74-76页 |
| 6.2.1 orf138基因的克隆与测序 | 第74-76页 |
| 6.2.2 重组质粒序列分析 | 第76页 |
| 6.3 讨论 | 第76-78页 |
| 7 白菜Ogura雄性不育系不同转育世代与亲本蕾期基因表达差异比较研究 | 第78-90页 |
| 7.1 材料与方法 | 第78-83页 |
| 7.1.1 实验材料 | 第78-79页 |
| 7.1.2 RNA的分离及检测 | 第79-80页 |
| 7.1.3 cDNA-AFLP技术 | 第80-83页 |
| 7.1.3.1 cDNA的合成 | 第80-81页 |
| 7.1.3.2 cDNA酶切、连接 | 第81页 |
| 7.1.3.3 模板的预扩增和选择性扩增 | 第81-82页 |
| 7.1.3.4 测序胶电泳 | 第82-83页 |
| 7.1.3.5 银染方法 | 第83页 |
| 7.1.4 统计分析 | 第83页 |
| 7.2 结果与分析 | 第83-88页 |
| 7.2.1 总RNA的提取与cDNA的合成 | 第83-85页 |
| 7.2.2 BC_1和BC_2与其亲本的基因表达比较 | 第85-87页 |
| 7.2.3 F_1、BC_1和BC_2与轮回亲本间基因差异表达比较 | 第87-88页 |
| 7.3 讨论 | 第88-90页 |
| 结论 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-102页 |
| 博士期间发表的论文及论著 | 第102页 |
