| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-26页 |
| 1.1 自由基 | 第11-13页 |
| 1.2 抗氧化物酶 | 第13-16页 |
| 1.2.1 超氧化物歧化酶 | 第13-15页 |
| 1.2.2 谷胱甘肽过氧化物酶 | 第15-16页 |
| 1.3 纳米二氧化钛 | 第16-20页 |
| 1.3.1 性质 | 第16-18页 |
| 1.3.2 Nano-TiO_2合成 | 第18-19页 |
| 1.3.3 Nano-TiO_2应用 | 第19页 |
| 1.3.4 在生物中的相互作用 | 第19-20页 |
| 1.4 二氧化钛对蛋白的影响的研究方法 | 第20-24页 |
| 1.4.1 红外光谱法 | 第21-22页 |
| 1.4.2 圆二色谱法 | 第22-23页 |
| 1.4.3 zeta电势 | 第23-24页 |
| 1.4.4 活力对比 | 第24页 |
| 1.5 研究的主要内容与立题依据 | 第24-26页 |
| 第2章 SOD和GPx活性酶的模拟 | 第26-45页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验材料 | 第27-28页 |
| 2.2.1 试剂 | 第27-28页 |
| 2.2.2 仪器 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-35页 |
| 2.3.1 序列设计 | 第28-29页 |
| 2.3.2 重组工程菌 | 第29页 |
| 2.3.3 PET32a(+)-65P的表达与纯化 | 第29-30页 |
| 2.3.4 Se-CuZn-65p的制备 | 第30-31页 |
| 2.3.5 金属离子含量的测定 | 第31-32页 |
| 2.3.6 GPx和SOD的活力测定 | 第32页 |
| 2.3.7 动力学研究 | 第32-33页 |
| 2.3.8 Se-CuZn-65P对牛心肌线粒体氧化应激损伤的保护 | 第33-35页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第35-44页 |
| 2.4.1 Se-CuZn-65P的有关预测 | 第35-36页 |
| 2.4.2 65P蛋白表达与纯化 | 第36-38页 |
| 2.4.3 Se-CuZn-65p的合成 | 第38-40页 |
| 2.4.4 酶活性质 | 第40页 |
| 2.4.5 动力学分析 | 第40-41页 |
| 2.4.6 Se-CuZn-65P对损伤线粒体膨胀度和脂质过氧化的影响 | 第41-44页 |
| 2.5 小结 | 第44-45页 |
| 第3章 生理pH下纳米TiO_2对CuZn-SOD的影响 | 第45-65页 |
| 3.1 引言 | 第45-47页 |
| 3.2 实验材料 | 第47-48页 |
| 3.2.1 试剂 | 第47页 |
| 3.2.2 仪器 | 第47-48页 |
| 3.3 实验方法 | 第48-50页 |
| 3.3.1 Nano-TiO_2的制备及表征 | 第48页 |
| 3.3.2 光催化活性测定 | 第48页 |
| 3.3.3 超氧化物阴离子的测定 | 第48-49页 |
| 3.3.4 蛋白的纯化 | 第49页 |
| 3.3.5 活力测定 | 第49页 |
| 3.3.6 活力影响实验 | 第49页 |
| 3.3.7 红外光谱 | 第49-50页 |
| 3.3.8 圆二色谱 | 第50页 |
| 3.3.9 Zeta电势 | 第50页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第50-63页 |
| 3.4.1 Nano-TiO_2的特性 | 第50-51页 |
| 3.4.2 Nano-TiO_2的光催化活性 | 第51-52页 |
| 3.4.3 超氧阴离子 | 第52-54页 |
| 3.4.4 蛋白纯化 | 第54-56页 |
| 3.4.5 活力测定 | 第56-57页 |
| 3.4.6 红外光谱 | 第57-58页 |
| 3.4.7 圆二光谱结果 | 第58-61页 |
| 3.4.8 Zeta电势 | 第61-63页 |
| 3.5 小结 | 第63-65页 |
| 第4章 结论与展望 | 第65-66页 |
| 4.1 结论 | 第65页 |
| 4.2 展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-77页 |
| 作者简介 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
