摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
中英文缩略词对照 | 第11-12页 |
文献综述 | 第12-20页 |
1.1 血脑屏障的结构和功能 | 第12-14页 |
1.1.1 脑微血管内皮细胞 | 第13页 |
1.1.2 紧密连接 | 第13-14页 |
1.1.3 星型胶质细胞 | 第14页 |
1.1.4 周细胞 | 第14页 |
1.2 开放血脑屏障的方法 | 第14-15页 |
1.3 药物跨血脑屏障转运的方式 | 第15页 |
1.3.1 扩散作用 | 第15页 |
1.3.2 载体转运 | 第15页 |
1.3.3 主动运输 | 第15页 |
1.4 超声联合微泡对血脑屏障的作用 | 第15-17页 |
1.4.1 超声的特性及生物学作用 | 第15-16页 |
1.4.2 聚焦超声对血脑屏障通透性的影响 | 第16-17页 |
1.4.3 诊断超声联合微泡开放血脑屏障 | 第17页 |
1.5 血脑屏障通透性变化的检测方法 | 第17-20页 |
1.5.1 血脑屏障体外模型的建立及功能测定 | 第17-18页 |
1.5.2 动物模型血脑屏障开放的检测方法 | 第18-20页 |
前言 | 第20-21页 |
第一部分 可行性研究及超声设备的初步筛选 | 第21-31页 |
1.1 概述 | 第21页 |
1.2 材料与方法 | 第21-25页 |
1.2.1 主要试剂 | 第21页 |
1.2.2 实验动物 | 第21页 |
1.2.3 实验设备与仪器 | 第21-22页 |
1.2.4 主要溶液的配制及设备的准备 | 第22-23页 |
1.2.5 分组及实验方法 | 第23-24页 |
1.2.6 制备透射电镜超薄切片 | 第24-25页 |
1.2.7 灌注 | 第25页 |
1.2.8 评价血脑屏障是否开放 | 第25页 |
1.2.9 统计学方法 | 第25页 |
1.3 实验结果 | 第25-29页 |
1.3.1 超声联合微泡作用的影像学分析 | 第25-27页 |
1.3.2 伊文思蓝标准曲线 | 第27页 |
1.3.3 各组伊文思蓝含量的测定结果 | 第27-28页 |
1.3.4 透射电镜下各组的脑组织超微结构 | 第28-29页 |
1.4 讨论 | 第29-31页 |
第二部分 开放血脑屏障的条件优化及安全性评价 | 第31-42页 |
2.1 概述 | 第31页 |
2.2 材料与方法 | 第31-34页 |
2.2.1 主要试剂 | 第31页 |
2.2.2 主要设备与仪器 | 第31-32页 |
2.2.3 实验动物准备 | 第32页 |
2.2.4 主要溶液的配制及设备的准备 | 第32页 |
2.2.5 实验分组 | 第32-33页 |
2.2.6 超声辐照过程 | 第33页 |
2.2.7 灌注 | 第33-34页 |
2.2.8 评价血脑屏障是否开放 | 第34页 |
2.2.9 统计学方法 | 第34页 |
2.3 实验结果 | 第34-40页 |
2.3.1 不同超声功率和频率对血脑屏障的影响 | 第34-35页 |
2.3.2 辐照时长 | 第35-36页 |
2.3.3 紧密连接和周围脑组织超微结构变化 | 第36-38页 |
2.3.4 伊文思蓝浓度 | 第38页 |
2.3.5 HE染色结果 | 第38-39页 |
2.3.6 血脑屏障闭合时间 | 第39-40页 |
2.4 讨论 | 第40-42页 |
第三部分 多普勒诊断超声促进抗肿瘤药甲氨蝶呤透过血脑屏障的实验 | 第42-48页 |
3.1 概述 | 第42页 |
3.2 材料与方法 | 第42-44页 |
3.2.1 主要试剂 | 第42页 |
3.2.2 主要设备与仪器 | 第42页 |
3.2.3 主要溶液的配制及设备的准备 | 第42-43页 |
3.2.4 实验分组及方法 | 第43页 |
3.2.5 灌注 | 第43-44页 |
3.2.6 制作冰冻切片的方法同前一部分 | 第44页 |
3.2.7 高效液相色谱法测定脑内MTX浓度 | 第44页 |
3.2.8 统计学方法 | 第44页 |
3.3 实验结果 | 第44-46页 |
3.3.1 EB荧光强度 | 第44-45页 |
3.3.2 甲氨蝶呤标准曲线 | 第45-46页 |
3.3.3 高效液相测定脑组织MTX含量 | 第46页 |
3.4 讨论 | 第46-48页 |
结果与讨论 | 第48-50页 |
参考文献 | 第50-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
个人简历 | 第57页 |