| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一部分 AQUAPROIN-8 在卵泡发育中的作用与机制 | 第11-37页 |
| 第一章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 水通道蛋白的简介 | 第11-12页 |
| 1.2 简述水通道蛋白AQP8 | 第12-13页 |
| 1.2.1 AQP8的分布 | 第12页 |
| 1.2.2 AQP8的生理功能 | 第12-13页 |
| 1.3 卵泡的概述 | 第13-16页 |
| 1.3.1 卵泡的发育 | 第13-14页 |
| 1.3.2 卵泡颗粒细胞的介绍 | 第14-16页 |
| 1.4 立题依据及研究意义 | 第16-19页 |
| 1.4.1 立题依据 | 第16-17页 |
| 1.4.2 研究基础 | 第17-18页 |
| 1.4.3 研究意义 | 第18-19页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第19-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-22页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第19-21页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-28页 |
| 2.2.1 AQP8基因敲除鼠的鉴定 | 第22-23页 |
| 2.2.2 卵巢固定染色与卵泡计数 | 第23-24页 |
| 2.2.3 3D卵泡培养 | 第24-26页 |
| 2.2.4 颗粒细胞实验 | 第26-28页 |
| 第三章 实验结果 | 第28-35页 |
| 3.1 AQP8基因型鉴定结果 | 第28-29页 |
| 3.2 AQP8敲除鼠有腔卵泡数目增多，但直径不变 | 第29页 |
| 3.3 AQP8敲除鼠在卵泡体外 3D培养的成腔率和成活率明显增加 | 第29-30页 |
| 3.4 AQP8与FSH对颗粒细胞增殖的影响 | 第30-31页 |
| 3.5 AQP8与FSH对颗粒细胞迁移的影响 | 第31-32页 |
| 3.6 AQP8敲除不影响雌二醇和孕激素的分泌，并且CYP19A1, CYP11A1和STAR MRNA表达量没有差异 | 第32-35页 |
| 讨论 | 第35-37页 |
| 第二部分 阿尔兹海默症小鼠模型血液生物标志物研究 | 第37-60页 |
| 第一章 绪论 | 第37-42页 |
| 1.1 阿尔兹海默病的简介 | 第37-38页 |
| 1.2 阿尔兹海默症诊断手段 | 第38-39页 |
| 1.3 阿尔兹海默症生物标志物简介 | 第39-40页 |
| 1.4 动物模型 | 第40页 |
| 1.5 立题依据 | 第40-42页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第42-49页 |
| 2.1 实验材料 | 第42-44页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第42-43页 |
| 2.1.2 主要实验仪器 | 第43页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第43-44页 |
| 2.2 实验方法 | 第44-49页 |
| 2.2.1 APP/PS1转基因鼠的繁殖与鉴定 | 第44-46页 |
| 2.2.2 水迷宫实验操作 | 第46-47页 |
| 2.2.3 小鼠摘眼球取血及血清制备 | 第47页 |
| 2.2.4 小鼠灌注取脑及脑组织免疫组化 | 第47页 |
| 2.2.5 ELISA实验操作 | 第47-49页 |
| 第三章 实验结果 | 第49-58页 |
| 3.1 转基因小鼠基因型鉴定结果 | 第49-50页 |
| 3.2 脑组织免疫组化结果 | 第50-52页 |
| 3.3 水迷宫实验结果 | 第52-54页 |
| 3.4 血清中AΒ40, AΒ42 含量测定实验结果 | 第54-56页 |
| 3.5 血清中炎性因子 Α-2M CFH和CLUSTERIN含量测定实验结果 | 第56-58页 |
| 讨论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 作者简介及攻读硕士期间的科研成果 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
