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喜树CMCs和DDCs体系对香豆素类成分的生物转化

中文摘要第6-7页
Abstract第7-8页
第一章 前言第9-26页
    1.1 喜树碱(CPT)生物合成途径以及相关的酶和基因第9-11页
        1.1.1 喜树碱第9页
        1.1.2 喜树碱的生物合成途径第9-10页
        1.1.3 相关的酶和基因第10-11页
    1.2 植物分生组织第11-12页
        1.2.1 植物分生组织概述第11页
        1.2.2 植物分生组织特征第11-12页
        1.2.3 植物分生组织研究进展第12页
        1.2.4 植物分生组织研究意义第12页
    1.3 香豆素简介第12-19页
        1.3.1 香豆素的生物活性第12-16页
        1.3.2 香豆素的应用第16-17页
        1.3.3 香豆素苷的应用第17-18页
        1.3.4 香豆素苷的制备第18-19页
    1.4 生物转化简介第19-24页
        1.4.1 生物转化系统第19-21页
        1.4.2 生物转化的反应类型第21-24页
        1.4.3 生物转化技术的应用第24页
    1.5 本研究的目的和意义第24-26页
第二章 喜树CMCs特性验证第26-36页
    2.1 材料与仪器第26页
        2.1.1 实验材料第26页
        2.1.2 实验试剂第26页
        2.1.3 实验仪器第26页
    2.2 实验方法第26-27页
        2.2.1 细胞形态第26-27页
        2.2.2 抗辐射实验第27页
    2.3 实验结果第27-34页
        2.3.1 细胞形态学验证第27-28页
        2.3.2 细胞辐射死亡率验证第28-34页
    2.4 小结第34-36页
第三章 喜树碱生物合成相关酶的基因表达第36-42页
    3.1 材料与仪器第36页
        3.1.1 实验试剂第36页
        3.1.2 实验仪器第36页
    3.2 实验方法第36-39页
        3.2.1 Real time PCR检测mRNA的表达变化第37-38页
        3.2.2 喜树碱(CPT)和 10-羟基喜树碱(HCPT)含量的测定第38-39页
    3.3 实验结果第39-41页
        3.3.1 喜树CMCs体系和DDCs体系中相关酶的表达量第39-40页
        3.3.2 喜树碱(CPT)和 10-羟基喜树碱(HCPT)的含量第40-41页
    3.4 小结第41-42页
第四章 喜树CMCs和DDCs对香豆素的生物转化第42-75页
    4.1 材料与仪器第42页
        4.1.1 实验试剂第42页
        4.1.2 实验仪器第42页
    4.2 实验方法第42-49页
        4.2.1 生物转化底物的制备第42-47页
        4.2.2 转化体系培养第47页
        4.2.3 生物转化实验第47-49页
    4.3 实验结果第49-74页
        4.3.1 底物(I)生物转化结果第49-55页
        4.3.2 底物(II)生物转化结果第55-62页
        4.3.3 底物(III)生物转化结果第62-68页
        4.3.4 底物(IV)生物转化结果第68-74页
    4.4 小结第74-75页
第五章 单胺转化酶(MAO)抑制活性的测定第75-78页
    5.1 材料与仪器第75页
        5.1.1 实验材料第75页
        5.1.2 实验试剂第75页
        5.1.3 实验仪器第75页
    5.2 实验方法第75-76页
        5.2.1 单胺氧化酶的制备第75页
        5.2.2 MAO蛋白质含量测定第75-76页
        5.2.3 MAO活性的测定第76页
    5.3 实验结果第76-77页
        5.3.1 MAO蛋白质含量测定第76页
        5.3.2 MAO活性的测定第76-77页
    5.4 小结第77-78页
第六章 结论与展望第78-79页
参考文献第79-90页
攻读硕士学位期间发表的论文第90-91页
附录 化合物图谱第91-99页
致谢第99页

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