| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第15-21页 |
| 1.1 极低频电磁场简介 | 第15页 |
| 1.2 极低频电磁场对免疫相关功能的影响 | 第15-17页 |
| 1.2.1 极低频电磁场对免疫细胞增殖的影响 | 第16页 |
| 1.2.2 极低频电磁场对免疫细胞凋亡方面的影响 | 第16页 |
| 1.2.3 极低频电磁场对免疫细胞因子的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.4 极低频电磁场对免疫系统遗传学方面的影响 | 第17页 |
| 1.3 极低频电磁场对学习记忆功能及信号途径的影响 | 第17-18页 |
| 1.4 原花青素的研究现状 | 第18-20页 |
| 1.4.1 原花青素简介 | 第18页 |
| 1.4.2 原花青素的生物活性 | 第18-20页 |
| 1.5 本论文的研究目的意义和内容安排 | 第20-21页 |
| 1.5.1 本课题研究的目的意义 | 第20页 |
| 1.5.2 本课题内容安排 | 第20-21页 |
| 第二章 莲房原花青素对ELF-EMF致免疫损伤的调节作用及其机制研究 | 第21-47页 |
| 前言 | 第21-22页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 实验动物和细胞 | 第22页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.3 仪器与设备 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-30页 |
| 2.2.1 辐射装置 | 第23页 |
| 2.2.2 实验动物分组与辐射 | 第23-24页 |
| 2.2.3 脏器指数的测定 | 第24页 |
| 2.2.4 血常规的检测 | 第24页 |
| 2.2.5 血浆和肝脏中IL-4 和INF-γ 浓度的测定 | 第24页 |
| 2.2.6 脾淋巴细胞准备 | 第24页 |
| 2.2.7 T、B淋巴细胞增殖率的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.8 NK细胞活性测定 | 第25页 |
| 2.2.9 脾脏组织中细胞因子IL-2、IL-6、IL-10、IFN-γ和TNF-α 蛋白水平的测定 | 第25-28页 |
| 2.2.10 脾脏组织中抗氧化酶SOD、CAT、GSH-Px1蛋白表达量的测定 | 第28页 |
| 2.2.11 脾脏组织中DNA含量的测定 | 第28-29页 |
| 2.2.12 流式细胞仪检测各组小鼠脾脏细胞周期 | 第29页 |
| 2.2.13 流式细胞仪检测各组小鼠脾脏细胞凋亡率 | 第29-30页 |
| 2.2.14 脾脏组织中Bcl-2 家族蛋白表达的测定 | 第30页 |
| 2.2.15 脾脏组织中Caspase-3，Caspase-9 蛋白表达的测定 | 第30页 |
| 2.2.16 统计学分析 | 第30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-43页 |
| 2.3.1 LSPCs对小鼠脏器指数的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.2 LSPCs对小鼠血常规的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.3 LSPCs对小鼠血浆和肝脏中IL-4 和INF-γ 含量的影响 | 第32-34页 |
| 2.3.4 LSPCs对小鼠脾脏T、B淋巴细胞增殖的影响 | 第34页 |
| 2.3.5 LSPCs对小鼠脾脏NK细胞活性的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.6 LSPCs对小鼠脾脏中细胞因子水平表达的影响 | 第35-37页 |
| 2.3.7 LSPCs对小鼠脾脏抗氧化酶蛋白表达量的影响 | 第37-39页 |
| 2.3.8 LSPCs对小鼠脾脏DNA含量的影响 | 第39页 |
| 2.3.9 LSPCs对各组小鼠脾细胞周期的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.10 LSPCs对脾细胞凋亡的影响 | 第40-41页 |
| 2.3.11 LSPCs对脾脏Bcl-2 家族蛋白表达的影响 | 第41-42页 |
| 2.3.12 LSPCs对脾脏细胞Caspase-3 和Caspase-9 蛋白表达的影响 | 第42-43页 |
| 2.4 讨论 | 第43-46页 |
| 2.5 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 莲房原花青素对ELF-EMF致海马组织钙信号通路紊乱的调控作用 | 第47-60页 |
| 前言 | 第47-48页 |
| 3.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第48页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第48页 |
| 3.1.3 仪器与设备 | 第48-49页 |
| 3.2 实验方法 | 第49-50页 |
| 3.2.1 辐照装置 | 第49页 |
| 3.2.2 实验动物分组与辐照 | 第49页 |
| 3.2.3 海马组织中Ca~(2+)含量测定 | 第49页 |
| 3.2.4 Western-bloting测定海马组织中CaMK II，PP2B，BDNF，Gα(i)，PKC-alpha，PKC-beta II和PKA C alpha，PKA RII b蛋白表达 | 第49-50页 |
| 3.2.5 ELASA试剂盒检测IP3和DAG浓度 | 第50页 |
| 3.2.6 统计学分析 | 第50页 |
| 3.3 实验结果 | 第50-56页 |
| 3.3.1 LSPCs对小鼠海马细胞中Ca~(2+)浓度的影响 | 第50-51页 |
| 3.3.2 LSPCs对小鼠海马CaMK II、PP2B含量的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.3 LSPCs对小鼠海马BDNF含量的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.4 LSPCs对小鼠海马Gα(i)蛋白含量的影响 | 第53页 |
| 3.3.5 LSPCs对小鼠海马IP3和DAG含量的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.6 LSPCs对小鼠海马PKC-alpha，PKC-betaII含量的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.7 LSPCs对小鼠海马PKA C alpha，PKA RII b蛋白表达的影响 | 第55-56页 |
| 3.4 LSPCs对ELF-EMF致学习记忆损伤调节作用信号通路图 | 第56-57页 |
| 3.5 讨论 | 第57-59页 |
| 3.6 本章小结 | 第59-60页 |
| 第四章 结论与展望 | 第60-62页 |
| 4.1 结论 | 第60-61页 |
| 4.1.1 LSPCs对ELF-EMF致免疫功能损伤的调节作用 | 第60页 |
| 4.1.2 LSPCs对ELF-EMF致海马组织钙信号通路紊乱的调控作用 | 第60-61页 |
| 4.2 展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第70页 |
