| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 第一部分 酒精性肝纤维化体外模型的建立 | 第14-21页 |
| 1 材料与方法 | 第14-18页 |
| 1.1 材料及仪器 | 第14-16页 |
| 1.2 实验方法 | 第16-18页 |
| 2 结果 | 第18-19页 |
| 3 讨论 | 第19-20页 |
| 4 结论 | 第20-21页 |
| 第二部分 IL-22对乙醛诱导的HSC-T6s活化增殖的影响 | 第21-38页 |
| 1 材料与方法 | 第21-29页 |
| 1.1 材料及仪器 | 第21-23页 |
| 1.2 实验方法 | 第23-29页 |
| 2 结果 | 第29-34页 |
| 2.1 MTT法检测HSC-T6s增殖情况 | 第29-30页 |
| 2.2 流式细胞术检测HSC-T6s周期分布 | 第30-31页 |
| 2.3 western blotting法检测 α-SMA蛋白的表达 | 第31-32页 |
| 2.4 ICC法检测 α-SMA蛋白的表达 | 第32-34页 |
| 3 讨论 | 第34-37页 |
| 3.1 IL-22 与肝纤维化研究进展 | 第34页 |
| 3.2 细胞周期分布概述 | 第34-35页 |
| 3.3 IL-22 对乙醛诱导的HSC-T6s增殖活化的影响 | 第35-37页 |
| 4 结论 | 第37-38页 |
| 第三部分 IL-22抑制乙醛诱导的HSC-T6s活化增殖的机制探讨 | 第38-50页 |
| 1 材料与方法 | 第38-44页 |
| 1.1 材料及仪器 | 第38-40页 |
| 1.2 实验方法 | 第40-44页 |
| 2 结果 | 第44-47页 |
| 2.1 western blotting法检测Nrf2蛋白的表达 | 第44-45页 |
| 2.2 ICC法检测Nrf2蛋白的定位 | 第45页 |
| 2.3 分光光度法检测培养上清液中MDA、GSH含量 | 第45-47页 |
| 3 讨论 | 第47-49页 |
| 3.1 ALD与氧化应激 | 第47页 |
| 3.2 Nrf2与肝脏疾病 | 第47-48页 |
| 3.3 IL-22 对HSC-T6s内Nrf2-Keap1-ARE轴的影响 | 第48-49页 |
| 4 结论 | 第49-50页 |
| 第四部分 展望与不足 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 综述 | 第55-63页 |
| 参考文献 | 第60-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 个人简历 | 第64页 |
