缩略词表 | 第6-8页 |
摘要 | 第8-11页 |
Abstract | 第11-14页 |
前言 | 第15-20页 |
1 研究现状 | 第15-16页 |
2 数字基因表达谱技术 | 第16-18页 |
3 研究目的、内容及技术路线 | 第18-20页 |
第一章 TDCIPP暴露致PC12细胞损伤的毒性效应 | 第20-36页 |
1 实验材料与方法 | 第20-27页 |
1.1 实验材料 | 第20-24页 |
1.1.1 主要材料与试剂 | 第20-21页 |
1.1.2 主要仪器与设备 | 第21-22页 |
1.1.3 主要试剂的配制 | 第22-24页 |
1.2 实验方法 | 第24-27页 |
1.2.1 细胞培养 | 第24-25页 |
1.2.2 实验分组及处理 | 第25页 |
1.2.3 CCK-8 法检测细胞生存率 | 第25页 |
1.2.4 分子探针(DCFH-DA)法检测细胞活性氧含量 | 第25页 |
1.2.5 ELISA酶联免疫法检测细胞SOD、GSH和MDA含量 | 第25页 |
1.2.6 Annexin V-FITC/ PI双染法检测细胞凋亡率 | 第25-26页 |
1.2.7 Western blot检测PC12细胞Bcl-2、Bax蛋白表达水平 | 第26页 |
1.2.8 统计学分析 | 第26-27页 |
2 实验结果 | 第27-32页 |
2.1 NGF诱导PC12细胞分化 | 第27页 |
2.2 TDCIPP暴露对PC12细胞生存率的影响 | 第27-28页 |
2.3 TDCIPP暴露对PC12细胞ROS水平的影响 | 第28-29页 |
2.4 TDCIPP暴露对PC12细胞氧化应激水平的影响 | 第29-31页 |
2.4.1 TDCIPP暴露对PC12细胞SOD含量的影响 | 第29页 |
2.4.2 TDCIPP暴露对PC12细胞GSH含量的影响 | 第29页 |
2.4.3 TDCIPP暴露对PC12细胞MDA含量的影响 | 第29-31页 |
2.5 TDCIPP暴露对PC12细胞凋亡的影响 | 第31页 |
2.6 TDCIPP暴露对PC12细胞Bcl-2 和Bax蛋白表达的影响 | 第31-32页 |
3 讨论分析 | 第32-35页 |
3.1 TDCIPP暴露抑制PC12细胞增殖 | 第32-33页 |
3.2 TDCIPP暴露引起PC12细胞发生氧化应激反应 | 第33-34页 |
3.3 TDCIPP暴露引起PC12细胞凋亡 | 第34-35页 |
4 小结 | 第35-36页 |
第二章 利用数字基因表达谱技术研究TDCIPP对PC12细胞的毒性作用机制 | 第36-57页 |
1 实验材料与方法 | 第36-40页 |
1.1 实验材料 | 第36-37页 |
1.1.1 主要材料与试剂 | 第36-37页 |
1.1.2 主要仪器与设备 | 第37页 |
1.1.3 主要试剂的配制 | 第37页 |
1.2 实验方法 | 第37-40页 |
1.2.1 细胞培养 | 第37页 |
1.2.2 实验分组及处理 | 第37页 |
1.2.3 数字基因表达谱测序分析 | 第37-38页 |
1.2.4 qRT-PCR验证DGE测序数据的准确性 | 第38-40页 |
1.2.5 Western blot检测PC12细胞PI3K/Akt信号通路蛋白表达水平 | 第40页 |
1.2.6 统计学分析 | 第40页 |
2 实验结果 | 第40-53页 |
2.1 DGE测序数据结果与分析 | 第40-47页 |
2.1.1 测序数据及其质量评估 | 第40页 |
2.1.2 reads与参考基因组比对情况统计 | 第40-42页 |
2.1.3 基因表达水平分析 | 第42页 |
2.1.4 重复样本间相关性检测 | 第42-44页 |
2.1.5 差异表达基因筛选分析 | 第44-45页 |
2.1.6 差异表达基因的GO富集分析 | 第45-46页 |
2.1.7 差异表达基因的KEGG富集分析 | 第46-47页 |
2.2 qRT-PCR验证DGE测序结果中差异表达的基因 | 第47-49页 |
2.3 TDCIPP暴露对PC12细胞PI3K/Akt信号通路蛋白表达的影响 | 第49-53页 |
3 讨论分析 | 第53-56页 |
3.1 TDCIPP暴露条件下差异表达基因的分析 | 第53-54页 |
3.2 PI3K/Akt信号通路对细胞凋亡的影响 | 第54-56页 |
4 小结 | 第56-57页 |
总结与展望 | 第57-59页 |
1 总结 | 第57页 |
2 展望 | 第57-59页 |
参考文献 | 第59-67页 |
个人简历 | 第67-68页 |
致谢 | 第68页 |