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利用磷酸二羟基丙酮依赖型醛缩酶和甘油激酶合成稀有糖

摘要第3-4页
Abstract第4页
第一章 绪论第7-15页
    1.1 C-C的合成第7页
    1.2 醛缩酶的催化机理及类型第7-10页
        1.2.1 醛缩酶的催化机理第7-8页
        1.2.2 醛缩酶的类型第8-10页
    1.3 海栖热袍菌简介第10页
    1.4 Nus融合标签介绍第10-11页
    1.5 甘油激酶简介第11页
    1.6 稀有糖第11-13页
        1.6.1 稀有糖及其应用第11-12页
        1.6.2 稀有糖的合成途径第12-13页
    1.7 本论文的研究意义和主要研究内容第13-15页
        1.7.1 本论文的研究意义第13-14页
        1.7.2 本论文的主要研究内容第14-15页
第二章 材料与方法第15-28页
    2.1 实验材料第15-19页
        2.1.1 菌株和质粒第15页
        2.1.2 酶、试剂及耗材第15-16页
        2.1.3 培养基及其他溶液的配制第16-18页
        2.1.4 主要仪器第18-19页
    2.2 实验方法第19-28页
        2.2.1 大肠杆菌高效感受态的制取第19页
        2.2.2 大肠杆菌质粒转化第19页
        2.2.3 重组载体的构建第19-21页
        2.2.4 粗提质粒方法第21页
        2.2.5 质粒的构建第21-22页
        2.2.6 RhaD_(T.mari)蛋白的氨基酸序列同源性比对第22页
        2.2.7 Nus-RhaD_(T.mari)醛缩酶的表达和纯化第22-23页
        2.2.8 Nus标签的切除及目的蛋白的纯化第23页
        2.2.9 RhaD_(T.mari)和Nus-RhaD_(T.mari)醛缩酶的立体选择性分析第23-24页
        2.2.10 温度对RhaD_(T.mari)醛缩酶的影响第24页
        2.2.11 Nus-RhaD_(T.mari)以DL3磷酸甘油为起始底物“一釜四酶法”合成稀有糖第24-25页
        2.2.12 稀有糖的分离纯化第25-27页
        2.2.13 GK酶的表达与纯化第27页
        2.2.14 其他醛缩酶及甘油磷酸氧化酶的表达和纯化第27页
        2.2.15 以甘油或二羟基丙酮为起始底物“一釜多酶法”合成酮糖第27-28页
第三章 结果与讨论第28-44页
    3.1 RhaD_(T.mari)醛缩酶的克隆及在合成稀有糖的应用第28-38页
        3.1.1 重组质粒pET43a-rhaD_(T.mari)的构建第28-29页
        3.1.2 RhaD_(T.mari)蛋白的氨基酸序列同源性比对第29页
        3.1.3 Nus-RhaD_(T.mari)醛缩酶的表达与纯化第29-30页
        3.1.4 Nus-RhaD_(T.mari)融合蛋白Nus标签的去除第30-31页
        3.1.5 RhaD_(T.mari)和Nus-RhaD_(T.mari)醛缩酶的立体选择性分析第31-33页
        3.1.6 温度对RhaD_(T.mari)酶活的影响第33页
        3.1.7 Nus-RhaD_(T.mari)以DL-GP为起始底物“一釜四酶法”合成稀有糖第33页
        3.1.8 大量反应后生成产物的 1H NMR鉴定第33-38页
    3.2 甘油激酶的克隆及在合成酮糖中的应用第38-44页
        3.2.1 重组质粒pET28a-glpK的构建第38页
        3.2.2 甘油激酶的表达和纯化第38-39页
        3.2.3 甘油磷酸氧化酶和多个醛缩酶的表达纯化第39-40页
        3.2.4 TLC检测以甘油为起始底物“一釜多酶法”合成酮糖第40页
        3.2.5 HPLC检测以甘油为起始底物的“一釜多酶法”合成酮糖第40-42页
        3.2.6 TLC检测以二羟基丙酮为起始底物“一釜多酶法”合成酮糖第42页
        3.2.7 HPLC检测以二羟基丙酮为起始底物“一釜多酶法”合成酮糖第42-44页
主要结论与展望第44-46页
    主要结论第44-45页
    展望第45-46页
致谢第46-47页
参考文献第47-51页
附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文第51页

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