| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-18页 |
| 1.1 调节性B细胞的研究进展 | 第11-16页 |
| 1.1.1 调节性B细胞的来源与分化 | 第12页 |
| 1.1.2 调节性B细胞参与移植免疫耐受形成的机制 | 第12-16页 |
| 1.1.3.总结 | 第16页 |
| 1.2 本文主要工作 | 第16-17页 |
| 1.3 本论文的结构安排 | 第17-18页 |
| 第二章 小鼠胰岛移植模型的建立 | 第18-28页 |
| 2.1 实验动物与饲养 | 第18页 |
| 2.2 实验材料 | 第18-20页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第18页 |
| 2.2.2 试剂与材料 | 第18-19页 |
| 2.2.3 主要试剂配制 | 第19-20页 |
| 2.3 糖尿病小鼠模型建立 | 第20-21页 |
| 2.3.1 方法 | 第20-21页 |
| 2.3.2 造模成功判定标准 | 第21页 |
| 2.4 胰岛细胞的分离 | 第21-24页 |
| 2.4.1 配制胶原酶P | 第21页 |
| 2.4.2 摘取胰腺 | 第21-22页 |
| 2.4.3 消化胰腺 | 第22页 |
| 2.4.4 中止消化 | 第22页 |
| 2.4.5 洗涤胰岛细胞 | 第22页 |
| 2.4.6 纯化胰岛细胞 | 第22-24页 |
| 2.5 胰岛细胞移植 | 第24-25页 |
| 2.5.1 胰岛细胞富集 | 第24页 |
| 2.5.2 肾包膜下移植 | 第24-25页 |
| 2.5.3 移植成功或排斥判定标准 | 第25页 |
| 2.6 抗体用法 | 第25页 |
| 2.7 血糖值曲线图 | 第25-27页 |
| 2.8 长期耐受小鼠肾脏免疫组化切片 | 第27页 |
| 2.9 本章小结 | 第27-28页 |
| 第三章 移植后淋巴细胞检测 | 第28-38页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28-31页 |
| 3.1.1 实验动物及饲养 | 第28页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第28页 |
| 3.1.3 试剂与材料 | 第28-29页 |
| 3.1.4 主要试剂配制 | 第29页 |
| 3.1.5 实验方法 | 第29-31页 |
| 3.2 结果 | 第31-37页 |
| 3.2.1 移植术后CD19+CD5+CD1d+B10细胞比例改变 | 第31-32页 |
| 3.2.2 移植术后CD19+Tim-1+B细胞比例改变 | 第32-33页 |
| 3.2.3 移植术后CD4+CD25+Treg细胞比例改变 | 第33-34页 |
| 3.2.4 移植术后CD4+IFN-γ+Th1细胞比例改变 | 第34-35页 |
| 3.2.5 移植术后CD4+IL-4+Th2细胞比例改变 | 第35-36页 |
| 3.2.6 移植术后受体小鼠各细胞比例 | 第36-37页 |
| 3.3 统计学方法 | 第37页 |
| 3.4 本章小结 | 第37-38页 |
| 第四章 调节性B细胞的体外扩增 | 第38-42页 |
| 4.1 材料与方法 | 第38-39页 |
| 4.1.1 实验动物及饲养 | 第38页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第38页 |
| 4.1.3 试剂与材料 | 第38-39页 |
| 4.1.4 主要试剂配制 | 第39页 |
| 4.1.5 实验方法 | 第39页 |
| 4.2 结果 | 第39-41页 |
| 4.2.1 扩增后CD19+CD5+CD1d+B10细胞比例改变 | 第39-41页 |
| 4.3 统计学方法 | 第41页 |
| 4.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第五章 结论 | 第42-45页 |
| 5.1 本文的主要贡献 | 第44页 |
| 5.2 下一步工作的展望 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 硕期间取得的研究成果 | 第51-52页 |
