| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-28页 |
| 1.1 蛋白质组学研究 | 第14-19页 |
| 1.1.1 蛋白质组学的研究技术 | 第14-18页 |
| 1.1.2 蛋白质组学在中医药研究中的应用 | 第18-19页 |
| 1.2 注射用血塞通研究概述 | 第19-22页 |
| 1.2.1 注射用血塞通简介 | 第19-20页 |
| 1.2.2 注射用血塞通药理作用研究进展 | 第20-21页 |
| 1.2.3 注射用血塞通临床应用简介 | 第21-22页 |
| 1.3 参麦注射液研究概述 | 第22-25页 |
| 1.3.1 参麦注射液简介 | 第22-23页 |
| 1.3.2 参麦注射液药理作用研究进展 | 第23-25页 |
| 1.3.3 参麦注射液临床应用简介 | 第25页 |
| 1.4 本论文研究内容 | 第25-28页 |
| 第二章 注射用血塞通抗心肌缺血再灌注蛋白质组学研究 | 第28-40页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第28-32页 |
| 2.2.1 实验试剂与仪器 | 第28-30页 |
| 2.2.2 心肌缺血再灌注大鼠模型制备、给药及取样 | 第30-31页 |
| 2.2.3 血清中LDH和CK-MB的测定 | 第31页 |
| 2.2.4 双向电泳及差异蛋白鉴定 | 第31页 |
| 2.2.5 Western blot验证差异蛋白 | 第31-32页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第32页 |
| 2.3 实验结果 | 第32-36页 |
| 2.3.1 注射用血塞通降低血清中LDH和CK-MB的含量 | 第32-33页 |
| 2.3.2 差异蛋白分析及鉴定 | 第33-36页 |
| 2.3.3 差异蛋白分析的Western blot验证结果 | 第36页 |
| 2.4 讨论与小结 | 第36-40页 |
| 第三章 注射用血塞通心肌保护作用研究 | 第40-56页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第40-47页 |
| 3.2.1 实验试剂与仪器 | 第40-42页 |
| 3.2.2 细胞培养及缺氧/复氧模型和叔丁基双氧水损伤模型的制备 | 第42页 |
| 3.2.3 注射用血塞通对心肌细胞毒性的考察 | 第42页 |
| 3.2.4 MTT法检测H/R损伤条件下心肌细胞存活率 | 第42-43页 |
| 3.2.5 H/R损伤条件下心肌细胞内丙酮酸脱氢酶活性检测 | 第43页 |
| 3.2.6 H/R损伤条件下心肌细胞内丙酮酸含量检测 | 第43-44页 |
| 3.2.7 H/R损伤条件下心肌细胞内乙酰CoA含量检测 | 第44页 |
| 3.2.8 化学发光法检测H/R损伤条件下心肌细胞内ATP含量 | 第44-45页 |
| 3.2.9 定磷法检测H/R损伤条件下心肌细胞中Na~+-K~+-ATPase、Ca~(2+)-Mg~(2+)-ATPase活性 | 第45-46页 |
| 3.2.10 Western blot法检测H/R损伤条件下心肌细胞能量代谢相关蛋白的表达 | 第46页 |
| 3.2.11 t-BHP损伤条件下心肌细胞存活率、LDH释放率和MDA含量的测定 | 第46-47页 |
| 3.2.12 统计学分析 | 第47页 |
| 3.3 实验结果 | 第47-54页 |
| 3.3.1 注射用血塞通对H9c2细胞毒性的结果 | 第47-48页 |
| 3.3.2 注射用血塞通提高H/R损伤条件下H9c2细胞的存活率 | 第48页 |
| 3.3.3 注射用血塞通增加H/R损伤条件下H9c2细胞内丙酮酸脱氢酶活性 | 第48-49页 |
| 3.3.4 注射用血塞通降低H/R损伤条件下H9c2细胞内丙酮酸含量 | 第49-50页 |
| 3.3.5 注射用血塞通增加H/R损伤条件下H9c2细胞内乙酰CoA含量 | 第50-51页 |
| 3.3.6 注射用血塞通提高H/R损伤条件下H9c2细胞ATP水平 | 第51页 |
| 3.3.7 注射用血塞通增加H/R损伤条件下H9c2细胞ATPase活性 | 第51-52页 |
| 3.3.8 注射用血塞通增加H/R损伤条件下H9c2细胞能量代谢相关蛋白的表达 | 第52-53页 |
| 3.3.9 注射用血塞通提高t-BHP损伤条件下H9c2细胞存活率、降低LDH释放率和MDA含量 | 第53-54页 |
| 3.4 讨论与小结 | 第54-56页 |
| 第四章 参麦注射液心肌保护药效物质研究 | 第56-69页 |
| 4.1 引言 | 第56页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第56-61页 |
| 4.2.1 实验试剂与仪器 | 第56-57页 |
| 4.2.2 细胞培养及叔丁基双氧水损伤模型的制备 | 第57-58页 |
| 4.2.3 参麦注射液化学组分对心肌细胞毒性的考察 | 第58页 |
| 4.2.4 参麦注射液化学组分保护心肌细胞的活性筛选以及LC-MS分析 | 第58-59页 |
| 4.2.5 参麦注射液及化合物对心肌细胞毒性的考察 | 第59页 |
| 4.2.6 MTT法检测参麦注射液及化合物作用后心肌细胞的存活率 | 第59页 |
| 4.2.7 化学发光法检测参麦注射液及化合物作用后心肌细胞内ATP的含量 | 第59-60页 |
| 4.2.8 参麦注射液及化合物作用后心肌细胞内丙酮酸含量的检测 | 第60页 |
| 4.2.9 参麦注射液及化合物作用后心肌细胞内丙酮酸脱氢酶活性的检测 | 第60-61页 |
| 4.2.10 统计学分析 | 第61页 |
| 4.3 实验结果 | 第61-67页 |
| 4.3.1 参麦注射液化学组分对H9c2细胞毒性的结果 | 第61-62页 |
| 4.3.2 参麦注射液化学组分活性筛选以及LC-MS鉴定结果 | 第62-63页 |
| 4.3.3 参麦注射液及化合物对H9c2细胞毒性的结果 | 第63-64页 |
| 4.3.4 参麦注射液及化合物提高心肌细胞的存活率 | 第64-65页 |
| 4.3.5 参麦注射液及化合物提高心肌细胞内ATP水平 | 第65-66页 |
| 4.3.6 参麦注射液及化合物降低心肌细胞内丙酮酸含量 | 第66页 |
| 4.3.7 参麦注射液及化合物增加心肌细胞内丙酮酸脱氢酶活性 | 第66-67页 |
| 4.4 讨论与小结 | 第67-69页 |
| 第五章 总结与展望 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-78页 |
| 作者简历 | 第78页 |
