| 中文摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 中文文摘 | 第7-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| 1.1 选题依据 | 第12-13页 |
| 1.2 文献综述 | 第13-28页 |
| 1.2.1 糖尿病 | 第14-21页 |
| 1.2.1.1 糖尿病的概念及分类 | 第14页 |
| 1.2.1.2 糖尿病并发症 | 第14-15页 |
| 1.2.1.3 糖尿病肾病与炎症因子 | 第15-21页 |
| 1.2.2 运动与炎症因子 | 第21-25页 |
| 1.2.2.1 一次急性力竭运动与体内炎症因子的变化 | 第22页 |
| 1.2.2.2 重复性力竭运动与体内炎症因子的变化 | 第22-23页 |
| 1.2.2.3 抗阻运动与体内炎症因子的变化 | 第23-24页 |
| 1.2.2.4 有氧运动与体内炎症因子的变化 | 第24-25页 |
| 1.2.3 茶多酚 | 第25-28页 |
| 1.2.3.1 茶多酚的概念及特征 | 第25页 |
| 1.2.3.2 茶多酚与炎症因子 | 第25-28页 |
| 第二章 实验对象与方法 | 第28-42页 |
| 2.1 实验对象 | 第28-29页 |
| 2.1.1 实验对象的来源 | 第28页 |
| 2.1.2 动物的饲养 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 2.2.1 实验流程图 | 第29-30页 |
| 2.2.2 糖尿病模型的建立、实验分组、实验干预方法 | 第30-31页 |
| 2.3 实验取材 | 第31页 |
| 2.4 实验指标的检测 | 第31-38页 |
| 2.4.1 ELISA法检测大鼠肾匀浆中TNF-α水平和血清胰岛素水平 | 第31-32页 |
| 2.4.2 血液指标的检测 | 第32-34页 |
| 2.4.3 HE染色观察大鼠肾脏组织结构的变化 | 第34页 |
| 2.4.4 Real-time PCR(qPCR)技术检测大鼠肾脏IL-1β、IL-6mRNA表达量 | 第34-38页 |
| 2.5 主要试剂 | 第38-39页 |
| 2.6 主要实验仪器 | 第39-40页 |
| 2.7 统计学方法 | 第40-42页 |
| 第三章 结果 | 第42-54页 |
| 3.1 大鼠的外形特征 | 第42-44页 |
| 3.1.1 成模情况 | 第42页 |
| 3.1.2 实验大鼠饲养期间的特征比较 | 第42页 |
| 3.1.3 大鼠体重变化 | 第42-44页 |
| 3.2 光镜下观察肾脏组织的病理结果 | 第44-46页 |
| 3.3 各组大鼠肾脏重、肾脏肥大指数(KI)的变化 | 第46-47页 |
| 3.3.1 各组大鼠肾脏重量的变化 | 第46-47页 |
| 3.3.2 各组大鼠KI的变化 | 第47页 |
| 3.4 各组大鼠血液指标变化 | 第47-51页 |
| 3.4.1 各组大鼠的血糖的变化 | 第47-48页 |
| 3.4.2 各组大鼠的血清胰岛素的变化 | 第48-49页 |
| 3.4.3 各组大鼠的胰岛素抵抗指数的变化 | 第49-50页 |
| 3.4.4 各组大鼠血清尿素氮含量的变化 | 第50页 |
| 3.4.5 各组大鼠的血清肌酐含量的变化 | 第50-51页 |
| 3.5 各组大鼠肾脏炎症因子的变化 | 第51-54页 |
| 3.5.1 各组大鼠肾脏组织IL-1βmRNA表达量的变化 | 第51-52页 |
| 3.5.2 各组大鼠肾脏组织IL-6mRNA表达量的变化 | 第52-53页 |
| 3.5.3 各组大鼠肾脏组织TNF-α水平的变化 | 第53-54页 |
| 第四章 分析与讨论 | 第54-64页 |
| 4.1 2型糖尿病大鼠模型的建立 | 第54-55页 |
| 4.2 有氧运动和茶多酚补充对2型糖尿病大鼠血糖的影响 | 第55-56页 |
| 4.3 有氧运动和茶多酚补充对2型糖尿病大鼠血清胰岛素抵抗指数的影响 | 第56-58页 |
| 4.4 有氧运动和茶多酚补充对2型糖尿病大鼠肾功能的影响 | 第58-60页 |
| 4.5 有氧运动和茶多酚补充对糖尿病大鼠肾脏炎症因子表达的影响 | 第60-64页 |
| 第五章 结论与创新点 | 第64-66页 |
| 5.1 结论 | 第64页 |
| 5.2 创新点 | 第64-66页 |
| 附录1 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-80页 |
| 攻读学位期间担任的科研任务与主要成果 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82-85页 |
