| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 简缩词表 | 第7-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1 蛙病毒分类 | 第10页 |
| 2 蛙病毒生物学特征 | 第10-11页 |
| 3 蛙病毒的分布与危害 | 第11-12页 |
| 4 蛙病毒感染的诊断与防治 | 第12-14页 |
| 5 蛙病毒感染后在宿主体内的分布 | 第14页 |
| 6 蛙病毒感染的组织病理损伤 | 第14-15页 |
| 7 病原感染对宿主免疫相关基因表达的影响 | 第15-19页 |
| 7.1 主要组织相容性复合体(MHC) | 第15-17页 |
| 7.1.1 MHC结构和功能 | 第15-16页 |
| 7.1.2 MHC基因在组织中的表达 | 第16页 |
| 7.1.3 MHC与抗病之间的关系 | 第16-17页 |
| 7.2 其他免疫相关因子 | 第17-19页 |
| 8 研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 CGSRV感染后的组织病理学研究 | 第20-30页 |
| 1 材料 | 第20-21页 |
| 1.1 动物 | 第20页 |
| 1.2 主要试剂、材料 | 第20-21页 |
| 1.3 主要仪器 | 第21页 |
| 2 方法 | 第21-22页 |
| 2.1 人工感染与临床症状观察 | 第21页 |
| 2.2 剖检变化观察与样品采集 | 第21页 |
| 2.3 组织病理损伤观察 | 第21-22页 |
| 2.3.1 石蜡切片的制备 | 第21-22页 |
| 2.3.2 结果观察 | 第22页 |
| 3 结果 | 第22-28页 |
| 3.1 CGSRV感染后临床症状与剖检变化观察 | 第22-23页 |
| 3.2 组织病理变化 | 第23-28页 |
| 4 讨论 | 第28-30页 |
| 4.1 CGSRV感染大鲵的临床症状 | 第28页 |
| 4.2 CGSRV感染大鲵的组织病理损伤特点 | 第28-30页 |
| 第三章 CGSRV感染大鲵的组织嗜性与分布研究 | 第30-38页 |
| 1 材料 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-32页 |
| 2.1 样品采集 | 第30-31页 |
| 2.2 组织DNA提取 | 第31页 |
| 2.3 qPCR方法灵敏度测定以及标准曲线的建立 | 第31-32页 |
| 2.3.1 质粒标准品浓度测定及拷贝数计算 | 第31页 |
| 2.3.2 标准曲线的建立以及扩增灵敏度检测 | 第31-32页 |
| 2.3.3 qPCR定量检测CGSRV组织分布情况 | 第32页 |
| 3 结果 | 第32-35页 |
| 3.1 引物溶解曲线分析 | 第32页 |
| 3.2 扩增曲线以及标准曲线 | 第32-33页 |
| 3.3 CGSRV感染后病毒在体内的动态分布 | 第33-35页 |
| 4 讨论 | 第35-38页 |
| 4.1 病原在组织中分布的检测方法分析 | 第35-36页 |
| 4.2 CGSRV动态分布与组织嗜性分析 | 第36-38页 |
| 第四章 CGSRV感染对大鲵MHC基因表达影响的研究 | 第38-51页 |
| 1 材料 | 第38页 |
| 2 方法 | 第38-41页 |
| 2.1 样品采集 | 第38-39页 |
| 2.2 总RNA的提取和cDNA的合成 | 第39-40页 |
| 2.2.1 组织RNA提取 | 第39页 |
| 2.2.3 cDNA合成 | 第39-40页 |
| 2.3 MHC基因在组织中表达量的测定 | 第40-41页 |
| 2.3.1 引物的设计与合成 | 第40-41页 |
| 2.3.2 大鲵组织中MHC基因的检测 | 第41页 |
| 2.4 数据处理分析 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-48页 |
| 3.1 CGSRV感染对大鲵MHC Ⅰ基因表达量的影响 | 第42-44页 |
| 3.2 CGSRV感染对大鲵MHC ⅡA基因表达量的影响 | 第44-46页 |
| 3.3 CGSRV感染对大鲵MHC ⅡB基因表达量的影响 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者攻读硕士学位期间参与发表的学术论文 | 第60页 |
