| 符号说明 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 1. 前言 | 第11-17页 |
| ·观赏海棠概述 | 第11页 |
| ·AsA的研究进展 | 第11-16页 |
| ·AsA在植物中的功能 | 第11-12页 |
| ·AsA在植物中的抗氧化作用 | 第11-12页 |
| ·AsA在植物细胞分裂和膨大的作用 | 第12页 |
| ·AsA在植物光合作用中的作用 | 第12页 |
| ·AsA在植物中的合成途径 | 第12-13页 |
| ·L-半乳糖途径 | 第12-13页 |
| ·碳链倒位途径 | 第13页 |
| ·邻酮醛糖途径 | 第13页 |
| ·AsA在植物体内的氧化再生 | 第13-14页 |
| ·AsA在植物体内合成和循环代谢相关酶研究进展 | 第14-16页 |
| ·L-半乳糖内酯脱氢酶 | 第14页 |
| ·L-半乳糖脱氢酶 | 第14页 |
| ·D-半乳糖醛酸还原酶 | 第14-15页 |
| ·抗坏血酸氧化酶 | 第15页 |
| ·抗坏血酸过氧化物酶 | 第15页 |
| ·单脱氢抗坏血酸还原酶 | 第15-16页 |
| ·脱氢抗坏血酸还原酶 | 第16页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第16-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-23页 |
| ·试验材料 | 第17页 |
| ·试验处理 | 第17页 |
| ·测试指标与方法 | 第17-22页 |
| ·单果重 | 第17-18页 |
| ·AsA、水溶性总糖与可滴定酸含量 | 第18-22页 |
| ·AsA含量的测定 | 第18页 |
| ·可溶性总糖含量 | 第18页 |
| ·可滴定酸含量测定 | 第18-19页 |
| ·GalLDH活性的测定 | 第19页 |
| ·GalDH活性的测定 | 第19页 |
| ·APX、AAO、DHAR、MDHAR活性的测定 | 第19-20页 |
| ·糖酸组分的测定 | 第20页 |
| ·过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第20-21页 |
| ·超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第21页 |
| ·丙二醛（MDA）含量的测定 | 第21-22页 |
| ·过氧化氢酶(CAT)的提取和测定 | 第22页 |
| ·数据统计与分析 | 第22-23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-46页 |
| ·果实重量的变化 | 第23-24页 |
| ·果实AsA含量的变化 | 第24-25页 |
| ·果实糖酸含量的变化 | 第25-27页 |
| ·AsA合成过程中关键酶活性的变化 | 第27-46页 |
| ·GalLDH活性的变化 | 第27-28页 |
| ·GalDH活性的变化 | 第28-29页 |
| ·AAO、APX、DHAR、MDHAR活性的变化 | 第29-31页 |
| ·富士和嘎啦果实生长发育过程中AsA含量及积累量变化 | 第31-33页 |
| ·富士和嘎啦果实生长发育过程中SOD活性变化 | 第33页 |
| ·富士和嘎啦果实生长发育过程中CAT活性变化 | 第33-34页 |
| ·富士和嘎啦果实生长发育过程中POD活性变化 | 第34-35页 |
| ·富士和嘎啦果实生长发育过程中MDA含量变化 | 第35-36页 |
| ·富士和嘎啦果实生长发育过程中酸组分含量变化 | 第36-41页 |
| ·富士和嘎啦果实生长发育过程中糖组分变化 | 第41-46页 |
| 4 讨论 | 第46-49页 |
| 5 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第57页 |