| 中文摘要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-8页 |
| 前言 | 第8-17页 |
| 一、PARP-1 的活化和基因转录调控 | 第8-13页 |
| （一） PARP-1 的结构、活化和代谢 | 第9-10页 |
| （二） PARP-1 的生物学功能 | 第10-11页 |
| （三） PARP-1 参与的信号转导与基因转录调控 | 第11-13页 |
| 1.PARP-1 参与的信号转导途径 | 第11-12页 |
| 2.PARP-1 与基因转录调控 | 第12-13页 |
| 二、NF-κB 的基因表达调控 | 第13-16页 |
| （一） NF-κB 的分子结构及活化机制 | 第13-15页 |
| （二） NF-κB 的信号途径 | 第15-16页 |
| （三） NF-κB 参与的基因转录调控 | 第16页 |
| 三、本论文的研究目的和意义 | 第16-17页 |
| 材料与方法 | 第17-26页 |
| 一、实验材料 | 第17-19页 |
| （一） 细胞及其培养试剂 | 第17页 |
| （二） 抗体和质粒 | 第17-18页 |
| （三） 试剂和酶类 | 第18页 |
| （四） 仪器设备 | 第18-19页 |
| （五） 主要溶液 | 第19页 |
| 二、实验方法 | 第19-26页 |
| （一） 细胞的培养及冻存 | 第19-20页 |
| （二） 瞬时转染 | 第20页 |
| （三） 荧光素酶双报告检测 | 第20页 |
| （四） 免疫印迹及免疫沉淀 | 第20-22页 |
| （五） 免疫荧光 | 第22-23页 |
| （六） 反式聚合酶链式反应（RT-PCR） | 第23-24页 |
| （七） 胞内活性氧检测 | 第24-26页 |
| 实验结果与分析 | 第26-33页 |
| 一、LPS 能够促进小鼠巨噬细胞中PARP-1 表达和蛋白PAR 化修饰水平升高 | 第26-27页 |
| 二、PARP-1 活性引起NF-κB 转录活性增强和促炎基因的表达 | 第27-29页 |
| 三、LPS 刺激引起P65 蛋白发生PAR 修饰和PARP-1 与P65 分子共沉淀 | 第29-30页 |
| 四、PARP-1 的活化整合了ERK 信号途径 | 第30-32页 |
| 五、ERK 和 ROS 对 NF-κB 的转录有协同作用 | 第32-33页 |
| 讨论 | 第33-35页 |
| 一、LPS 能够促进ANA-1 细胞中PARP-1 的活化 | 第33页 |
| 二、PARP-1 作用影响NF-ΚB 转录活化 | 第33-34页 |
| 三、PARP-1 的活化整合ERK 信号途径 | 第34-35页 |
| 结论和主要创新点 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-42页 |
| 英文缩写词 | 第42-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 在学期间公开发表论文及著作情况 | 第45页 |
