| 中文摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-16页 |
| 缩略词表 | 第16-19页 |
| 1 前言 | 第19-24页 |
| 2 膳食诱导肥胖和胰岛素抵抗大鼠模型的建立 | 第24-33页 |
| ·材料与方法 | 第24-27页 |
| ·主要仪器 | 第24页 |
| ·主要试剂 | 第24页 |
| ·实验动物 | 第24-25页 |
| ·大鼠饲料 | 第25-26页 |
| ·模型复制 | 第26页 |
| ·检测指标及方法 | 第26-27页 |
| ·数据处理 | 第27页 |
| ·结果 | 第27-29页 |
| ·大鼠的一般状况 | 第27页 |
| ·造模期间大鼠体重的变化 | 第27-28页 |
| ·造模结束时大鼠的胰岛素敏感性 | 第28页 |
| ·Ob大鼠模型成功率 | 第28页 |
| ·IR大鼠模型成功率 | 第28-29页 |
| ·Ob和IR模型大鼠的体重及胰岛素敏感性 | 第29页 |
| ·讨论 | 第29-32页 |
| ·试验动物及饲养环境的选择 | 第29页 |
| ·大鼠饲料配方的选择 | 第29-31页 |
| ·Ob及IR模型大鼠模型复制成功标准的确定及依据 | 第31页 |
| ·Ob与IR模型大鼠体重与胰岛素敏感性的比较 | 第31-32页 |
| ·小结 | 第32-33页 |
| 3 大鼠对膳食诱导肥胖和IR的易感性比较 | 第33-58页 |
| ·材料与方法 | 第33-44页 |
| ·主要仪器 | 第33页 |
| ·主要试剂 | 第33-35页 |
| ·实验用溶液的配制 | 第35-36页 |
| ·实验动物、饲料及造模方法 | 第36页 |
| ·动物分组 | 第36页 |
| ·检测标本的采集 | 第36-37页 |
| ·检测指标及方法 | 第37-44页 |
| ·数据处理 | 第44页 |
| ·结果 | 第44-53页 |
| ·不同状态大鼠体重比较 | 第44-45页 |
| ·不同状态大鼠体内脂肪含量的比较 | 第45-46页 |
| ·不同状态大鼠HOMA-IR的比较 | 第46-47页 |
| ·不同状态大鼠炎症标志物水平的比较 | 第47-48页 |
| ·不同状态大鼠脂联素mRNA表达和血清水平的比较 | 第48页 |
| ·不同状态大鼠抵抗素基因mRNA和血清水平的比较 | 第48-49页 |
| ·不同状态大鼠瘦素mRNA和血清水平的比较 | 第49-50页 |
| ·不同状态大鼠脂肪GLUT-4、PPAR-γ mRNA及NF-KB活化的比较 | 第50-52页 |
| ·不同状态大鼠脂肪细胞Bax及Bcl-2基因mRNA比值的比较 | 第52-53页 |
| ·讨论 | 第53-57页 |
| ·低度炎症的概念 | 第53页 |
| ·Ob、IR与低度炎症的关系 | 第53-54页 |
| ·对Ob与胰岛素抵抗不同易感性大鼠间的比较 | 第54-57页 |
| ·小结 | 第57-58页 |
| 4 脂联素、抵抗素基因单核苷酸多态性与膳食诱导OB和IR易感性的关系 | 第58-74页 |
| ·材料与方法 | 第58-62页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第58页 |
| ·动物、模型判定及标本采集 | 第58-59页 |
| ·SNPs的检测 | 第59-62页 |
| ·统计学方法 | 第62页 |
| ·结果 | 第62-68页 |
| ·均匀设计各方案PCR扩增结果 | 第62-63页 |
| ·ASA法PCR各方案结果的回归分析 | 第63页 |
| ·各对引物扩增条件的优化结果 | 第63-64页 |
| ·优化条件下ASA法PCR扩增结果 | 第64页 |
| ·脂联素基因C114T多态性的酶切结果 | 第64页 |
| ·脂联素基因SNPs各基因型 | 第64-65页 |
| ·抵抗素基因SNPs各基因型 | 第65-66页 |
| ·脂联素SNPs各类型的测序验证结果 | 第66页 |
| ·抵抗素SNPs各类型的测序验证结果 | 第66-67页 |
| ·对IR、Ob不同易感状态大鼠脂联素基因SNPs的检测结果 | 第67页 |
| ·对IR、Ob不同易感性大鼠抵抗素基因SNPs的检测结果 | 第67-68页 |
| ·讨论 | 第68-73页 |
| ·SNPs检测方法的选择 | 第68-70页 |
| ·均匀设计的引入使SNPs的检测得以顺利进行 | 第70-72页 |
| ·脂联素、抵抗素基因SNPs与大鼠Ob和IR易感性的关系 | 第72-73页 |
| ·小结 | 第73-74页 |
| 5 大豆异黄酮对肥胖和胰岛素抵抗大鼠胰岛素敏感性的影响及机制研究 | 第74-102页 |
| ·材料与方法 | 第74-75页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第74页 |
| ·动物及模型判定 | 第74页 |
| ·Ob模型大鼠分组 | 第74页 |
| ·IR模型大鼠分组 | 第74-75页 |
| ·SIF干预方法及标本采集 | 第75页 |
| ·检测指标及方法 | 第75页 |
| ·数据处理 | 第75页 |
| ·结果 | 第75-92页 |
| ·大鼠的一般状况 | 第76页 |
| ·SIF干预期间各组大鼠的摄食量 | 第76页 |
| ·SIF干预期间各组大鼠体重的变化 | 第76-77页 |
| ·SIF对大鼠内脏脂肪含量的影响 | 第77-78页 |
| ·SIF对大鼠IS的影响 | 第78-79页 |
| ·SIF对大鼠血清炎症标志物CRP、TNF-α及IL-6水平的影响 | 第79-80页 |
| ·SIF对大鼠脂联素mRNA的表达和血清蛋白水平的影响 | 第80-82页 |
| ·SIF对大鼠抵抗素mRNA表达和血清抵抗素水平的影响 | 第82-83页 |
| ·SIF对大鼠脂肪瘦素mRNA表达和血清瘦素水平的影响 | 第83-85页 |
| ·SIF对脂肪GLUT-4、PPAR-γ基因mRNA表达的影响 | 第85-86页 |
| ·SIF对肾周脂肪NF-κB p65mRNA表达和活化的影响 | 第86-88页 |
| ·SIF对脂肪细胞Bax、Bcl-2基因mRNA的影响 | 第88-89页 |
| ·各检测指标与IS(以HOMA-IR表示)的相关分析 | 第89-92页 |
| ·讨论 | 第92-100页 |
| ·分别观察SIF对Ob及IR模型大鼠影响的意义 | 第92-93页 |
| ·关于大豆异黄酮及其剂量选择 | 第93-94页 |
| ·SIF对Ob、IR大鼠体重、内脏脂肪含量及IS的影响及其作用机制 | 第94-100页 |
| ·小结 | 第100-102页 |
| 6 总结 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-111页 |
| 综述 | 第111-149页 |
| 肥胖、胰岛素抵抗与脂肪细胞多肽关联的发生机制的研究概况 | 第111-132页 |
| 参考文献 | 第126-132页 |
| 肥胖发生的机制研究 | 第132-149页 |
| 参考文献 | 第144-149页 |
| 致谢 | 第149-150页 |
| 附：博士期间以第一作者身份撰写论文一览表 | 第150-151页 |
